دور المكمل في أمراض الكلى: استنتاجات من مؤتمر جدل حول أمراض الكلى: تحسين النتائج العالمية (KDIGO) The role of complement in kidney disease: conclusions from a Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO) Controversies Conference

المجلة: Kidney International، المجلد: 106، العدد: 3
DOI: https://doi.org/10.1016/j.kint.2024.05.015
PMID: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38844295
تاريخ النشر: 2024-06-05

دور المكمل في أمراض الكلى: استنتاجات من مؤتمر جدل حول أمراض الكلى: تحسين النتائج العالمية (KDIGO)

مارينا فيفاريللي جوناثان بارات لورانس إتش بيك جونيور فادي فاخوري دانيال ب. غيل إلينا غويكويتشيا دي خورخي مارطا موسكا مارينا نوريس ماثيو سي. بيكيرينغ كاتالين سوزتاك جوشوا م. ثورمان مايكل تشيونغ جينيفر م. كينغ ميشيل جادول ولفغانغ سي. وينكلماير وريتشارد ج.ه. سميث ; لمشاركي المؤتمر مختبر أمراض الكلى، مستشفى الأطفال بامبينو جيسو، IRCCS، روما، إيطاليا؛ قسم علوم القلب والأوعية الدموية، جامعة ليستر، ليستر، المملكة المتحدة؛ قسم أمراض الكلى، كلية الطب بجامعة بوسطن شوبانيان وأفيديسيان ومركز بوسطن الطبي، بوسطن، ماساتشوستس، الولايات المتحدة الأمريكية؛ قسم أمراض الكلى، المركز الاستشفائي الجامعي، نانت، فرنسا؛ INSERM UMR S1064، نانت، فرنسا؛ مركز صحة الكلى والمثانة، كلية لندن الجامعية، المملكة المتحدة؛ قسم المناعة، طب العيون وطب الأنف والأذن والحنجرة، جامعة كومبلوتنسي، مدريد، إسبانيا؛ مجال الأمراض المزمنة وزراعة الأعضاء، مستشفى معهد الأبحاث 12 أكتوبر (imas12)، مدريد، إسبانيا؛ قسم الطب السريري والتجريبي – وحدة الروماتيزم، جامعة بيزا، بيزا، إيطاليا؛ مركز الأبحاث السريرية للأمراض النادرة ألدوا وشيلي داتشو، معهد الأبحاث الصيدلانية ماريو نيغري IRCCS، رانيكا، إيطاليا؛ مركز الأمراض الالتهابية، قسم المناعة والالتهاب، كلية إمبريال، حرم هامرسمث، لندن، المملكة المتحدة؛ قسم أمراض الكلى، قسم الطب، كلية بيرلمان للطب، جامعة بنسلفانيا، فيلادلفيا، بنسلفانيا، الولايات المتحدة الأمريكية؛ قسم أمراض الكلى وارتفاع ضغط الدم، جامعة كولورادو أنشوتز الطبية، أورا، كولورادو، الولايات المتحدة الأمريكية؛ KDIGO، بروكسل، بلجيكا؛ العيادات الجامعية سانت لوك، الجامعة الكاثوليكية في لوفان، بروكسل، بلجيكا؛ معهد سيلزمان لصحة الكلى، قسم أمراض الكلى، كلية الطب بجامعة بايلور، هيوستن، تكساس، الولايات المتحدة الأمريكية؛ مختبرات الأبحاث الجزيئية لأمراض الأنف والأذن والحنجرة والكلى، كلية كارفر للطب، جامعة آيوا، مدينة آيوا، آيوا، الولايات المتحدة الأمريكية؛ قسم الطب الباطني، قسم أمراض الكلى، كلية كارفر للطب، جامعة آيوا، مدينة آيوا، آيوا، الولايات المتحدة الأمريكية؛ و قسم طب الأطفال، قسم أمراض الكلى، كلية كارفر للطب، جامعة آيوا، آيوا سيتي، آيوا، الولايات المتحدة الأمريكية

يمكن أن يسبب أو يساهم تنشيط المكمل غير المنضبط في إصابة الكبيبات في العديد من أمراض الكلى. على الرغم من أن تنشيط المكمل يلعب دورًا سببيًا في متلازمة الانحلال الدموي اليوريمي غير النمطية واعتلال الكبيبات C3، فقد أظهرت مجموعة متزايدة من الأدلة على مدى العقد الماضي دورًا لتنشيط المكمل في العديد من أمراض الكلى الأخرى، بما في ذلك اعتلال الكلى السكري والعديد من التهاب الكبيبات. كما زاد عدد العلاجات المثبطة للمكمل المتاحة خلال نفس الفترة. في عام 2022، نظمت أمراض الكلى: تحسين النتائج العالمية (KDIGO) مؤتمرًا للجدل، “دور المكمل في أمراض الكلى”، لمعالجة الدور المتزايد لخلل تنظيم المكمل في الفيزيولوجيا المرضية، والتشخيص، وإدارة مختلف أمراض الكبيبات، السكري.
استلم في 22 ديسمبر 2023؛ تم تنقيحه في 25 أبريل 2024؛ تم قبوله في 22 مايو 2024؛ نُشر على الإنترنت في 4 يونيو 2024
اعتلال الكلى، وأشكال أخرى من متلازمة الانحلال الدموي اليوريمي. استعرض المشاركون في المؤتمر الأدلة على دور المكملات في كونها سببًا رئيسيًا أو ثانويًا في تقدم عدة حالات مرضية واعتبروا كيف يمكن أن تُفيد الأدلة المتعلقة بمشاركة المكملات في إدارة هذه الحالات. وصف المرضى المشاركون الذين يعانون من أمراض متعددة مرتبطة بالمكملات ومقدمو الرعاية مخاوف تتعلق بالتخطيط للحياة، والآثار المحيطة بالاختبارات الجينية، والحاجة إلى تنفيذ شامل للعلاجات الجديدة الفعالة في الممارسة السريرية. تم فحص قيمة المؤشرات الحيوية في مراقبة مسار المرض ودور البيئة الدقيقة الكبيبية في استجابة المكملات، وتم تحديد الفجوات الرئيسية في المعرفة وأولويات البحث.
المجلة الدولية للكلى (2024) 106، 369-391؛https://doi.org/10.1016/j.kint.2024.05.015
الكلمات الرئيسية: مثبط المكمل؛ إصابة ناتجة عن المكمل؛ إصابة كبيبية
© 2024 مرض الكلى: تحسين النتائج العالمية (KDIGO). نُشر بواسطة إلسفير إنك نيابة عن الجمعية الدولية لأمراض الكلى. هذه مقالة مفتوحة الوصول بموجب ترخيص CC BY-NC-ND (http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/).
في عام 2015، نظمت جمعية تحسين نتائج أمراض الكلى العالمية (KDIGO) مؤتمرًا حول الجدل بشأن مرضين نموذجيين من أمراض الكلى المرتبطة بالتكامل: متلازمة الانحلال الدموي اليوريمي غير النمطية (aHUS) واعتلال الكلية C3.
(C3G). منذ ذلك الحين، ظهرت أدلة على دور المكمل في سبب أو تقدم مجموعة أوسع من أمراض الكلى، بما في ذلك اعتلال الكلية السكري وعدد من التهاب كبيبات الكلى، مع مساهمات خلل المكمل تتراوح من السبب الأساسي إلى المحرك الثانوي للتقدم (الشكل 1). يبدو أن الكلى هي هدف رئيسي لخلل تنظيم المكمل (الشكل 2)، حيث قد تكون العيوب الجينية النظامية في بروتينات تنظيم المكمل هي السبب وراء اعتلالات الكلى المعزولة، وتشارك أشكال متعددة من أمراض الكلى جميع مسارات نظام المكمل. قد تكون القابلية الفريدة للكلى للإصابة الناتجة عن المتممات ناتجة عن عدة عوامل، بما في ذلك الضغط الهيدروستاتيكي العالي في الشعيرات الدموية الكلوية وترشيح البلازما في الشعيرات الكلوية، مما يؤدي معًا إلى تركيزات عالية من بروتينات المتممات بالقرب من غشاء القاعدة الكلوي. بالإضافة إلى ذلك، قد يزيد وجود الفتحات في خلايا البطانية الكلوية من وصول البروتينات الكبيرة في البلازما إلى غشاء القاعدة الكلوي. أخيرًا، لا يعبر غشاء القاعدة الكلوي عن منظمات المتممات الداخلية، التي توجد على خلايا البطانية.
في عام 2022، عقدت KDIGO مؤتمرها الثاني حول القضايا لمناقشة الدور المتنوع والمتزايد لخلل تنظيم المكملات في أمراض الكلى. كان هذا التوقيت مناسبًا، حيث توسعت العلاجات المثبطة للمكملات لأمراض الكلى من الإكوليزوماب ومشتقه طويل المفعول الرابوليزوماب (مثبطات C5 المستخدمة في aHUS) إلى الأفاكوبان (مثبط مستقبلات C5a المستخدم في التهاب الأوعية الدموية المرتبط بالأجسام المضادة للخلايا المتعادلة [ANCA]) وعدد من العوامل العلاجية الجديدة، بعضها في الاستخدام السريري لمؤشرات أخرى (الجدول 1، الشكل 3، والجدول التكميلي S1).
في المؤتمر، قام المشاركون بمراجعة الأدلة المتعلقة بكل مرض تم النظر فيه، لتحديد ما إذا كان المكمل يلعب دورًا أساسيًا أو ثانويًا في المرض وتطوره. كما قام المشاركون بفحص نقدي لقيمة المؤشرات الحيوية لنشاط المكمل في مراقبة مسار المرض، وما إذا كانت المحركات المحددة (أي، الوراثية أو المكتسبة) تعطل نشاط المكمل، والأثر المحتمل/دور البيئة المجهرية الكبيبية في المساهمة في استجابة المكمل. تم وصف كيف أن الأدلة الحالية تؤثر على الإدارة من حيث التقييمات المصلية أو الوراثية أو الأساليب المتعلقة بتثبيط المكمل. بالإضافة إلى ذلك، وصف المرضى ومقدمو الرعاية تجاربهم واهتماماتهم المتعلقة بالتشخيص والتنبؤ والإدارة (الجدول 2).
قدمت المؤتمر فرصة لإعادة النظر في الأدبيات الحالية حول aHUS وC3G لتقييم ما إذا كانت الإرشادات الموضحة في تقرير المؤتمر لعام 2015 تتطلب تحديثًا. بالنسبة للأمراض الأولية (C3G، التهاب كبيبات الكلى الغشائي التكاثري المعتمد على الأجسام المضادة [IC-MPGN]، والأشكال المعتمدة على المكملات من HUS)، كان التركيز على المعلومات الجديدة التي تؤثر على الإدارة منذ اجتماع 2015. بالنسبة لجميع الأمراض، تم تحديد مجالات التوافق (الجدول التكميلي S2) وأهم الفجوات المعرفية ذات الصلة سريريًا والأولويات الرئيسية للبحث (الجدول 3).
العروض التقديمية العامة للمؤتمر متاحة على موقع KDIGO،https://kdigo.org/conferences/controversies-conference-on-complement-in-ckd/.

اعتلال الكلى السكري والتصلب الكبيبي البؤري المتقطع (FSGS)

مرض الكلى السكري

على الرغم من أن البيانات التجريبية الحالية لا تدعم تنشيط المكمل كسبب رئيسي في مرض الكلى السكري (المعروف أيضًا باعتلال الكلى السكري)، تشير عدة أدلة إلى أنه يلعب دورًا مساهمًا في تقدم المرض. تم وصف تنشيط سلسلة المتممات في نماذج حيوانية متعددة من اعتلال الكلى السكري. يتم رؤية اعتلال الكلى السكري الأقل حدة في الفئران المتماثلة الزيجوت لاستهداف حذف C5a. أو C3aR الجينات أو مع مثبطات دوائية للتكامل. تتمثل إحدى قيود هذه الدراسات في أن نماذج الفئران لا تعكس بشكل جيد اعتلال الكلى السكري البشري، خاصة في مراحله المتأخرة. وقد أظهرت الدراسات المبكرة للمرشحين الجينيين أن المتغيرات الجينية المسببة للأمراض في جينات اللكتين المرتبط بالمانان مرتبطة بتقدم المرض. بالإضافة إلى ذلك، تشير تحليلات مندل المستندة إلى البيانات الملخصة إلى دور سببي للمكمل في مرض الكلى المزمن الناتج عن السكري. يتماشى مع هذه النتائج، تشير الأدلة التجريبية إلى أن فرط سكر الدم قد يسبب تنشيط المكملات من خلال زيادة نشاط اللكتين المرتبط بالمانان، وأن الجليكاسيون يعيق تنظيم المكملات. في المرضى الذين يعانون من مرض الكلى السكري، أظهرت الخزعات وجود ترسبات مكملات بشكل موضعي في الكبيبات، وقد حددت تحليلات تعبير الجينات في الكلى تنشيط جينات المكمل. لا يزال غير واضح ما إذا كان النظام المكمل يتم تفعيله بواسطة البيئة السكرية أو كيف تؤثر العمر، والجنس عند الولادة، والسمنة، والعدوى على استجابة النظام المكمل في اعتلال الكلى السكري ودوره المحتمل في تلف الخلايا البطانية.

FSGS

في نماذج الحيوانات، هناك أدلة على أن المكمل يتم تفعيله ويلعب دورًا في تقدم FSGS. ومع ذلك، فإن نماذج الحيوانات لا تعيد تمثيل FSGS البشري الناتج عن العوامل الوراثية أو عوامل النفاذية. في البشر، تشير الأدلة على تنشيط المكمل إلى بيانات المؤشرات الحيوية: مستويات C3 في البلازما ترتبط بنتيجة المرض؛ خزعات الكلى تظهر إيجابية لمنتجات تنشيط المكمل (معظمها في مناطق التصلب)؛ والبول يحتوي على مستويات أعلى من نواتج تنشيط المكمل. يظهر تحليل النسخ في متلازمة الكلى الانهيارية (FSGS) علامات الالتهاب، وقد تكون هذه هي شكل متلازمة الكلى الانهيارية الذي يكون فيه نشاط المكملات أكثر قوة. ومع ذلك، لم يتم تحديد طفرات جينات المكمل كعوامل مسببة في FSGS. من الجدير بالذكر أن المكمل يتم تفعيله بواسطة العدوى، وغالبًا ما ترتبط العدوى بانهيار متلازمة الكلى الكلوية.

الآثار السريرية لإدارة مرض الكلى السكري وFSGS

تدعم الأدلة تنشيط المكملات في مرض الكلى السكري استنادًا إلى دراسات تحليل البول والبلازما والكلى.
الشكل 1 | دور المكمل في أمراض الكلى المختلفة. يمكن أن يؤدي تنشيط المكمل غير المنضبط إلى التسبب أو المساهمة في إصابة الكبيبات في العديد من أمراض الكلى. (أ) الكبيبة الكلوية هي شبكة شعرية فريدة. تختلف خلايا بطانة الكبيبة الوعائية (GECs) عن معظم خلايا البطانة في أنها مسطحة بشكل استثنائي ومثقبّة بكثافة بواسطة فتحات عبر الخلايا، والتي تشكل من مساحتها السطحية. بالإضافة إلى ذلك، لأن الكبيبة تقع بين شريانيين – شريان وارد في الاتجاه العلوي وشريان صادر في الاتجاه السفلي – فإن الضغط الهيدروستاتيكي يكون مرتفعًا. تساهم هذه الخصائص، على الأقل جزئيًا، في النفاذية العالية لجدار الشعيرات الدموية الكبيبية للماء والذائبات الصغيرة، ولكن أيضًا في تعرض الكبيبة للخطر بسبب الوساطة بواسطة المكملات.
الأمراض النادرة النموذجية
وظيفة المكمل لها دور أساسي خلل المكمل هو المحرك الثانوي للإصابة
الأمراض متعددة العوامل الشائعة
AHUS
C3G
التهاب كبيبات الكلى الأولي
AAV، SLE IgAN، IgAVN
APS، مينيسوتا
التهاب كبيبات الكلى الثانوي MPGN الثانوي
اعتلال الكلى السكري
التصلب الجلدي البؤري
الشكل 2| الأمراض الكلوية الناتجة عن خلل تنظيم المكملات. وجهة نظر متفق عليها تقارن بين الأمراض النادرة ولكن النموذجية التي تتوسطها المكملات مثل متلازمة انحلال الدم اليوريمي غير النمطية (aHUS) واعتلال الكلية الناتج عن مكون المكمل 3 (C3G) مع الأمراض الأكثر تعقيدًا متعددة العوامل التي قد تلعب فيها تنشيط المكملات دورًا ثانويًا في المساهمة في عبء المرض. يتطلب دور المكملات في الأمراض متعددة العوامل التحقق من خلال التجارب السريرية ودراسات مؤشرات المكملات. AAV، التهاب الأوعية الدموية المرتبط بالأجسام المضادة للخلايا المتعادلة (ANCA)؛ APS، متلازمة الأجسام المضادة للفوسفوليبيد؛ FSGS، تصلب الكبيبات البؤري القطاعي؛ IC-MPGN، التهاب كبيبات الكلى الغشائي التكاثري المعتمد على المعقد المناعي؛ IgAN، اعتلال الكلية IgA؛ IgAVN، التهاب الأوعية الدموية المرتبط بـ IgA مع التهاب الكلى؛ MN، اعتلال الكلية الغشائي؛ MPGN، التهاب كبيبات الكلى التكاثري؛ SLE، الذئبة الحمامية الجهازية؛ TMA، الميكروأوعية الدموية التخثرية.
التأثير المحتمل لتثبيط المكمل
الخزعات في كل من المرضى ونماذج الحيوانات. غالبًا ما يتم الحصول على خزعات الكلى من المرضى الذين يعانون من مظاهر غير نمطية، مما يجعل من الصعب تحديد القيم المرجعية. في حالة اعتلال الكلى السكري وFSGS، تكون البيانات محدودة ويمكن أن تتأثر بالتنوع الظاهري (العدوى، مستوى السكر في الدم، إلخ). يجب أن تدرس الدراسات المستقبلية ارتباط علامات المكمل مع نشاط المرض وتقدمه، ولكن في الوقت الحالي، لا توجد أدلة كافية لتعزيز تسجيل التجارب السريرية بناءً على علامات المكمل. كان يُنظر عمومًا إلى أن تثبيط المكمل من المرجح أن يبطئ بدلاً من منع تقدم المرض، وأن الوزن العام للمخاطر مقابل الفوائد قد يكون أكثر ملاءمة لتثبيط المكمل في FSGS، حيث يكون التقدم أسرع وخيارات العلاج أقل، مقارنةً بمرض التغير الطفيف. بالنسبة للتدخلات العلاجية المعتمدة على المكمل في FSGS، يجب أن يركز تسجيل التجارب السريرية حاليًا على المعايير السريرية واستهداف المرضى الذين يعانون من مرض يتقدم بسرعة والذين فشلوا في العلاج القياسي وليس لديهم خيار علاجي آخر.
ليس من المعروف ما إذا كان تثبيط المكملات يوفر حماية في اعتلال الكلى السكري. نظرًا لانتشاره، هناك حاجة كبيرة غير ملباة للعلاجات الجديدة، خاصة للمرضى الذين لا يستجيبون للعلاجات الحالية. توصل المشاركون في الاجتماع إلى نفس الاستنتاج بشأن FSGS.
في كلا الحالتين، قد تكون التصاميم التجريبية المبتكرة (مثل التجارب السلة وتجارب المنصة) مفيدة لتقييم الفوائد المحتملة لدى المرضى الذين يظهرون تنشيطًا للمكمل.

التهاب كبيبات الكلى IgA والتهاب الأوعية المرتبط بـ IgA مع التهاب الكلى

تشير البيانات الحالية إلى أن تنشيط المكملات مهم بنفس القدر في مسببات مرض الكلى الناتج عن IgA (IgAN) والتهاب الأوعية المرتبط بـ IgA مع التهاب الكلى (IgAVN). في معظم حالات IgAN/IgAVN، يتم تحفيز تنشيط المكمل بواسطة الليكتين و/أو تفعيل المسار البديل، كما يتضح من خلال الأدلة الواسعة من دراسات المصل، وأنسجة الكلى، والبول، والوراثة في التهاب الكلى المناعي الأولي (IgAN) ودراسات خزعة الكلى والأمعاء والجلد في التهاب الأوعية الدموية المناعي الأولي (IgAVN). في كلا الحالتين، يحدث تنشيط المكملات بسبب الخلايا المساندية. ترسيب المعقدات المناعية هو سبب مهم لإصابة الكبيبات. في IgAV، يبدو أن تنشيط المكملات مهم أيضًا في تطور الآفات الجلدية والمعوية. ومع ذلك، فإن العلاقة الدقيقة بين مدى تنشيط المكملات وخطر إصابة الكلى وتقدم المرض في كل من IgAN وIgAVN تتطلب مزيدًا من التحقق. قد تكون هناك اختلافات عرقية أو إثنية.
الشكل 1 | (مستمر) الضرر والإصابة. (ب) يتم تنشيط سلسلة المتممات بشكل مستمر بسبب تفاعل C3. لا تستطيع مكونات المتممات النشطة التمييز بين الذات وغير الذات، حيث يعتمد الصحة على منظمات تنشيط المتممات (RCA) لمنع حدوث الضرر الناتج عن المتممات. تعبر خلايا الكبيبات عن عامل تسريع الانحلال، وبروتين المساعد الغشائي، ومجموعة التمايز 59 (CD59)؛ ومع ذلك، فإن تنظيم المتممات فوق الفتحات يعتمد على بروتينات RCA في الطور السائل مثل العامل H، والعامل I، وبروتين ربط C4b (C4BP)، ومثبط C1. لكل من 6 أمراض كبيبية (اعتلال الكبيبات الناتج عن المكون 3 [C3G]/التهاب كبيبات الكلى الغشائي المرتبط بالمعقد المناعي [IC-MPGN]، التهاب الكلى الغشائي [MN]، متلازمة انحلال الدم اليوريمي غير النمطية [aHUS]، التهاب الأوعية الدموية المرتبط بالأجسام المضادة للخلايا المتعادلة [ANCA] [AAV]، التهاب الكلى الذئبي [LN]، واعتلال الكلى IgA [IgAN])، يتم عرض المسار الرئيسي للمتممات، حيث يؤدي تنشيطه إلى الإصابة، مما ينتقل إلى مرحلة تكاثرية من الضرر الكبيبي. إذا لم يحدث تندب، فمن المتوقع أن تكون العديد من هذه التغيرات الكبيبية قابلة للعكس. مع تزايد عدد العوامل العلاجية التي تستهدف أجزاء مختلفة من سلسلة المتممات، سيكون من الضروري فهم كيف يساهم تنشيط المتممات في هذه الأمراض إذا كنا نرغب في استخدام هذه الأدوية الجديدة بحكمة لتحسين نتائج المرضى. AP، المسار البديل؛ C1INH، مثبط استراز C1؛ CP، المسار الكلاسيكي؛ DDD، مرض الترسب الكثيف؛ IgAVN، التهاب الأوعية المرتبط بـ IgA مع التهاب الكلى؛ LP، المسار المحفز؛ MAC، معقد الهجوم الغشائي؛ MASP، بروتين السيرين المرتبط بالليكتين (MBL)؛ MPO، ميويلوبيروكسيداز؛ NET، مصائد الخلايا المتعادلة خارج الخلوية؛ PR3، بروتيناز 3؛ TF، عامل الأنسجة؛ TMA، الميكروأوعية التخثرية؛ TP، المسار النهائي.
الجدول 1 | مثبطات المكملات في التطوير السريري لأمراض الكلى
هدف التثبيط دواء نوع المثبط آلية مسار التجارب السريرية
C1 ANX009 أجسام مضادة يعيق تفاعلات ركيزة C1q SC NCT05780515 (التهاب الكلى الذئبي، المرحلة 1، قيد التجنيد)
C3، C3b بيغسيتاكوبلان الببتيدات المرتبطة بالبولي إيثيلين جلايكول يرتبط بـ C3 و C3b ويمنع التفاعل والنشاط لمحوّلات C3 و C5 في المسارات الكلاسيكية والليكتين والبديلة SC مرتين في الأسبوع
NCT05148299 (تصلب الأوعية الدموية بعد زراعة النخاع العظمي، المرحلة الثانية، قيد التجنيد)
NCT04572854 (تكرار ما بعد الزرع C3G أو IC-MPGN، المرحلة 2، نشط وليس في مرحلة التوظيف)
NCT03453619 (C3G) (سلة في أمراض الكلى، المرحلة 2، مكتملة)
NCT05067127 (C3G أو IC-MPGN، المرحلة 3، نشط غير متRecruiting)
NCT05809531 (C3G أو IC-MPGN، المرحلة الثالثة من دراسة سابقة مفتوحة، قيد التوظيف)
C3 AMY101 ببتيد صغير يرتبط بـ C3 ويمنع ارتباطه وتقطيعه بواسطة محولات C3 إلى C3a و C3b الرابع NCT03316521 (المرحلة 1 متطوعين أصحاء من الذكور، مكتمل)
C3 ARO-C3 RNA صغيرة متداخلة يعيق تخليق C3 في الكبد SC NCT05083364 (المرحلة 1/2a تصعيد الجرعة: متطوعون أصحاء، مرضى بالغون يعانون من C3G وIgAN، قيد التجنيد)
C3b، C5 كي بي 104 الأجسام المضادة بالإضافة إلى مجال تنظيم العامل H يعيق المسارات البديلة والنهائية الرابع
NCT05517980 (IgAN و C3G المرحلة 2، لم يبدأ التسجيل بعد)
NCT05504187 (التهاب الكلى الذئبي المرحلة 2، لم يبدأ بعد في التجنيد)
C5 سيمديسيران RNA صغيرة متداخلة يمنع تخليق C5 في الكبد SC NCT03841448 (IgAN، المرحلة 2، مكتمل)
C5 كروفاليماب أجسام مضادة يمنع انقسام C5 بواسطة المحول C5 وريدياً، ثم تحت الجلد
NCT04958265 (AHUS، المرحلة 3، قيد التجنيد، الأطفال بين 28 يومًا و 17 عامًا)
NCT04861259 (AHUS، المرحلة 3، قيد التجنيد)
C5 إيكوليزوماب أجسام مضادة يمنع انقسام C5 بواسطة المحول C5 الرابع
NCT03518203 (HUS بعد زراعة النخاع العظمي مع متلازمة خلل وظائف الأعضاء المتعددة، المرحلة 2، مكتمل)
NCT01029587 (CAPS لتمكين زراعة الكلى، المرحلة 2، مكتملة)
NCT05702996 (HUS ثانوي بسبب جيمسيتابين، المرحلة 2، لم يبدأ بعد التسجيل)
NCT05726916 (HUS ثانوي بسبب طارئ ارتفاع ضغط الدم، المرحلة 2، لم يبدأ بعد في التجنيد)
NCT02205541 (STEC-HUS، المرحلة 3، مكتملة)
NCT05876351 (aHUS في الصين، المرحلة 3، قيد التجنيد)
C5 جيفوروليماب (ALXN1720) جسم مصغر ثنائي التخصص يرتبط بـ C5، مما يمنع انقسامه إلى C5a و C5b. كما أنه يرتبط بالألبومين، مما يزيد من نصف عمره. SC NCT05314231 (بروتينوريا، المرحلة 1B، مكتمل)
C5 رافوليزوماب أجسام مضادة يمنع انقسام C5 بواسطة المحول C5 الرابع، تحت الجلد
NCT04564339 (IgAN و LN، المرحلة 2، قيد التجنيد)
NCT04743804 (تصلب الشرايين المرتبط بالتحفيز، المرحلة 2، تم إنهاؤه)
NCT04543591 (HUS بعد زراعة النخاع العظمي للبالغين والمراهقين، المرحلة 3، قيد التجنيد)
NCT04557735 (متلازمة انحلال الدم اليوريمي بعد زراعة النخاع العظمي للأطفال، المرحلة 3، قيد التجنيد)
الجدول 1 | (مستمر) مثبطات المكملات في التطوير السريري لأمراض الكلى
هدف التثبيط دواء نوع المثبط آلية مسار التجارب السريرية
C5 نوماكوبان أو كوفرسين (rVA576) بروتين صغير يمنع تنشيط المكمل النهائي من خلال الارتباط بإحكام بـ C5 ومنع إفراز C5a وتكوين C5b-9، ويمنع الليوكوترين B4 عن طريق التقاط الأحماض الدهنية داخل جسم بروتين النوموكوبان. SC NCT04784455 (متلازمة انحلال الدم اليوريمي بعد زراعة النخاع العظمي للأطفال، المرحلة 3، قيد التجنيد)
C5a فيلوبليماب (IFX-1) أجسام مضادة يمنع نشاط C5a بشكل انتقائي مع ترك MAC intact الرابع
NCT03712345 (GPA و MPA، المرحلة 2، تم إنهاؤها)
NCT03895801 (GPA و MPA، المرحلة 2، مكتمل)
C5aR1 أفاكوبان جزيء صغير يمنع ارتباط الأنفيلاكتوكين C5a بمستقبل C5aR1 عن طريق الفم مرتين يومياً
NCT02464891 (AHUS على الغسيل الكلوي، المرحلة 2، تم إنهاؤه)
NCT03301467 (C3G، المرحلة 2، مكتملة)
NCT02384317 (IgAN، المرحلة 2، مكتمل)
NCT02994927 (AAV، المرحلة 3، مكتملة)
NCT01363388 (AAV، المرحلة 2، مكتمل)
NCT02222155 (AAV، المرحلة 2، مكتملة)
العامل ب أيونيس-إف بي-أل آر إكس أوليغونوكليوتيد مضاد يعيق تخليق العامل ب في الكبد SC
NCT04014335 (IgAN، المرحلة 2، نشط غير مت recruiting، ملصق ASN SA-PO926)
NCT05797610 (IgAN، المرحلة 3 قيد التجنيد)
العامل ب إبتاكوبان (LNP023) جزيء صغير يمنع نشاط إنزيمات التحويل C3 و C5 في المسار البديل عن طريق الفم مرتين يومياً
NCT04889430 (AHUS، المرحلة 3، قيد التجنيد)
NCT03832114 (C3G، المرحلة الثانية، البالغين الذين لديهم كلى أصلية أو مزروعة، التمديد NCT03955445)
NCT04817618 (C3G، المرحلة 3، البالغين والمراهقين >12 سنة، قيد التجنيد، تم الإبلاغ عن نتائج مؤقتة للبالغين)
NCT05755386 (IC-MPGN، المرحلة 3، البالغين والمراهقين فوق 12 عامًا، قيد التجنيد)
NCT03373461 (IgAN، المرحلة 2، مكتمل)
NCT04578834 (IgAN، المرحلة 3، اكتمل التوظيف، تم الإبلاغ عن النتائج الأولية)
NCT04154787 (MN، المرحلة 2، تم إنهاؤها)
NCT05268289 (LN، المرحلة 2، قيد التجنيد)
عامل Bb NM8074 الأجسام المضادة وحيدة النسيلة من خلال ربط Bb، فإنه قادر على تثبيط كل من المحولات C3 وC5 وتكوين MAC. الرابع
NCT06226662 (AAV، المرحلة 2، لم يبدأ التسجيل بعد)
NCT05647811 (C3G، المرحلة 1ب/2أ، لم يبدأ بعد التسجيل)
NCT05684159 (aHUS، المرحلة 2، لم يبدأ التسجيل بعد)
العامل D BCX10013 جزيء صغير يمنع تكوين المحولات C3 و C5 في المسار البديل بشكل أكثر كفاءة من BCX9930 عن طريق الفم مرة واحدة يومياً NCT06100900 (PNH، المرحلة 1، زيادة الجرعة)
العامل D دانيكوبان (ALXN2040، ACH-4471) جزيء صغير يمنع تكوين المحولات C3 و C5 في المسار البديل عن طريق الفم مرتين يومياً
NCT03124368 (C3G أو IC-MPGN، المرحلة 2، مكتمل)
NCT03369236 (C3G أو IC-MPGN، المرحلة 2، مكتمل)
NCT03459443 (C3G أو IC-MPGN، المرحلة 2، تم إنهاؤه)
العامل D فيميركوبان (ALXN2050، ACH0145228) جزيء صغير يمنع تكوين المحولات C3 و C5 في المسار البديل شفوي NCT05097989 (IgAN أو LN، المرحلة 2، قيد التجنيد)
ماسپ-2 CM338 الأجسام المضادة وحيدة النسيلة يعيق بدء مسار الليكتين SC NCT05775042 (IgAN، المرحلة 2، قيد التجنيد)
ماسپ-2 نارسوبليما (OMS721) أجسام مضادة يعيق بدء مسار الليكتين الرابع
NCT05855083 (متلازمة انحلال الدم اليوريمي بعد زراعة النخاع العظمي للأطفال، المرحلة 2، قيد التجنيد)
NCT03205995 (aHUS، المرحلة 3، الحالة غير معروفة)
NCT02682407 (C3G، IgAN، LN، MN، المرحلة 2، الحالة غير معروفة)
NCT03608033 (IgAN، المرحلة 3، تم إنهاؤها)
ماسپ-3 OMS906 أجسام مضادة يعيق بدء مسار الليكتين الرابع NCT06209736 (C3G، IC-MPGN، المرحلة 2، لم يبدأ التسجيل بعد)
رينين أليسكيرين جزيء صغير يمنع انقسام C3 الذي يتم بوساطة الرينين فموي NCT04183101 (C3G، المرحلة 2، قيد التجنيد)
العامل D دانيكوبان (ALXN2040، ACH-4471) جزيء صغير يمنع تكوين المحولات C3 و C5 في المسار البديل عن طريق الفم مرتين يومياً
NCT03124368 (C3G أو IC-MPGN، المرحلة 2، مكتمل)
NCT03369236 (C3G أو IC-MPGN، المرحلة 2، مكتمل)
NCT03459443 (C3G أو IC-MPGN، المرحلة 2، تم إنهاؤه)
العامل D فيميركوبان (ALXN2050، ACH0145228) جزيء صغير يمنع تكوين C3 و C5 المحولات في المسار البديل عن طريق الفم NCT05097989 (IgAN أو LN، المرحلة 2، قيد التجنيد)
MASP-2 CM338 أجسام مضادة وحيدة النسيلة يعيق بدء مسار اللكتين SC NCT05775042 (IgAN، المرحلة 2، قيد التجنيد)
MASP-2 نارسوبليماب (OMS721) أجسام مضادة يعيق بدء مسار اللكتين IV
NCT05855083 (HUS بعد زراعة النخاع العظمي للأطفال، المرحلة 2، قيد التجنيد)
NCT03205995 (aHUS، المرحلة 3، الحالة غير معروفة)
NCT02682407 (C3G، IgAN، LN، MN، المرحلة 2، الحالة غير معروفة)
NCT03608033 (IgAN، المرحلة 3، تم إنهاؤها)
MASP-3 OMS906 أجسام مضادة يعيق بدء مسار اللكتين IV NCT06209736 (C3G، IC-MPGN، المرحلة 2، لم يتم التجنيد بعد)
رينين أليسكيرين جزيء صغير يعيق انقسام C3 بواسطة الرينين عن طريق الفم NCT04183101 (C3G، المرحلة 2، قيد التجنيد)
متلازمة؛ GPA، التهاب الأوعية الدموية الحبيبي؛ HUS، متلازمة انحلال الدم اليوريمي؛ IC-MPGN، التهاب كبيبات الكلى المناعي؛ IgAN، اعتلال الكلى IgA؛ IV، عن طريق الوريد؛ LN، التهاب الكلى الذئبي؛ MAC،
مركب الهجوم الغشائي (C5b-9)؛ MASP، إنزيم سيرين المرتبط باللكتين المرتبط بالمانان؛ MN، اعتلال الكلى الغشائي؛ MPA، التهاب الأوعية الدقيقة؛ PNH، بيلة دموية ليلية متقطعة؛ SC، تحت الجلد؛ STEC، الإشريكية القولونية المنتجة للسموم شيجا؛ TMA، ميكروأوعية دموية خثارية.
اعتبارًا من 1 مارس 2024. بالنسبة للإكوليزوماب، لم يتم إدراج الدراسات المكتملة والمنشورة. بالنسبة لجميع العوامل، تم إدراج الدراسات التي تقيم الأمراض المغطاة في هذه الورقة فقط، ولم يتم إدراج الدراسات المنسحبة. كما لم يتم إدراج الدراسات حول العوامل العامة/المماثلة أو في المرحلة 4. الدراسات تشمل البالغين فقط ما لم يُذكر خلاف ذلك.
البيانات الحديثة لا تدعم دور الرينين في انقسام C 3 وتقترح أن استخدام الأليسكيرين كمانع للرينين لتقليل نشاط المكمل وتكوين المحولات C 3 هو مضلل.
الشكل 3| مثبطات علاجية لنشاط المكمل. في المستقبل القريب، ستتوفر أدوية متعددة تستهدف نظام المكمل. من المحتمل جدًا أن يختلف تأثير الدواء اعتمادًا على عملية المرض الأساسية وعوامل محددة للمريض مثل وجود متغيرات جينية في جينات المكمل أو الأجسام المضادة الذاتية لمكونات المكمل المختلفة، مما سيجعل الطب الدقيق ممكنًا. العوامل المكتوبة بخط عريض وصلت إلى المرحلة 3 أو لاحقًا في التطوير. CD59، دفاع المكمل 59؛ DAF، عامل تسريع الانحلال؛ FB، العامل B؛ FH، العامل H؛ FI، العامل I؛ MAC، مركب الهجوم الغشائي؛ MASP، إنزيم سيرين المرتبط باللكتين المرتبط بالمانان؛ MBL، اللكتين المرتبط بالمانان؛ MCP، بروتين المساعد الغشائي؛ TAFla، مثبط انحلال الفيبرين النشط؛ THBD، جين الثrombomodulin.
تلعب دورًا، حيث أظهرت ترسبات Clq الميسانجية أنها تتنبأ بأسوأ النتائج لـ IgAN فقط في السكان الآسيويين.
تشير الدراسات غير المعتمدة في مركز واحد إلى وجود ارتباط في IgAN بين تفاقم النتائج وزيادة علامات تنشيط المكمل في الكلى والبول والدم. تحتاج هذه الدراسات إلى التحقق المستقل، ويجب تقييم العلامات الحيوية لتحديد ما إذا كانت يمكن أن تحسن الدقة التنبؤية لأداة توقع مخاطر IgAN الدولية.

الآثار السريرية

في IgAN وIgAVN، لا توجد حاليًا علامات حيوية مرتبطة بالمكمل معتمدة (صبغات خزعة الكلى، علامات حيوية في البلازما أو البول، وأنماط وراثية) التي تُعلم
التنبؤ، اختيار العلاج، أو مراقبة استجابة العلاج.
هناك حاجة ملحة لتقييم دور العلاجات المكملية في IgAVN، IgAN/IgAVN المتكررة بعد الزرع، وIgAN/IgAVN لدى الأطفال. في IgAN، تظهر البيانات الحالية تأثيرًا مضادًا للبروتينات لانسداد المكمل، مما يدعم مزيدًا من تقييم العلاجات المكملية التي تستهدف مسارات المكمل اللكتين، البديل، والنهائي. قد يكون استخدام تثبيط المكمل فعالًا بشكل خاص في الأطفال، الذين يميلون إلى وجود مكون التهابي أكثر وضوحًا وأضرار أقل تندب مقارنة بالبالغين. حتى الآن، اقترحت التجارب السريرية من المرحلة 2 والمرحلة 3 للعلاجات المكملية في IgAN (<200 مريض) تقليلًا في البروتينوريا ولم تظهر أحداثًا سلبية كبيرة (الجدول التكميلي S1)، بما في ذلك، في

الجدول 2| مخاوف المرضى ومقدمي الرعاية، الاحتياجات غير الملباة، ووجهات النظر حول الاختبارات الجينية والخزعات المتكررة

المخاوف

  • الأمراض الكلوية التي يكون فيها دور اختلال المكمل محوريًا غالبًا ما لا تتوفر لها خيارات علاج فعالة معروفة، مما يؤدي إلى فشل كلوي وخطر التكرار بعد زراعة الكلى
  • يمكن أن تؤثر الأمراض الكلوية التي تتضمن فرط تنشيط المكمل بشكل عميق على الحياة اليومية للمرضى ومقدمي الرعاية، مما يحد من المشاركة في الأنشطة المهمة أو ذات المعنى
  • بالنسبة للمرضى الشباب، يؤدي نقص بيانات التاريخ الطبيعي إلى عدم اليقين بشأن مسار المرض وتأثيره، مما يمكن أن يؤثر على القرارات المتعلقة بالوظيفة وتخطيط الأسرة
  • الأدلة حول الإدارة الصحيحة للعديد من اعتلالات الكلى المرتبطة بالمكمل محدودة من حيث الكمية والجودة، وغالبًا ما تكون الوعي بالعلاجات المبتكرة (سواء في التجارب السريرية أو في السوق) غير كافٍ
  • العوامل المعتمدة ليست متاحة عالميًا بسبب محدودية القدرة على تحمل التكاليف
  • يؤخر نقص الوعي بالأمراض المرتبطة بالمكمل بين المهنيين الصحيين التشخيص ويعيق الإدارة المثلى
  • نظرًا لأن العلاجات المثبطة للمكمل تزيد من خطر العدوى، فإن استخدامها على المدى الطويل قد يكون مقلقًا

الاحتياجات غير الملباة

  • فهم أكثر انتشارًا وخبرة في علاج الأمراض الكلوية المرتبطة بالمكمل بين أطباء الكلى في جميع أنحاء العالم
  • دراسات التاريخ الطبيعي والعلامات الحيوية في الحالات النادرة
  • الوعي بالدراسات الحالية وإمكانية التسجيل بين المرضى ومقدمي الرعاية الصحية
  • تصميمات التجارب التي تزيد من احتمال تلقي العلاج النشط إما من خلال نسب غير 1:1 نشط:دواء وهمي أو من خلال تمديد مفتوح
  • برامج مع وصول مبكر للعلاج في الفئة العمرية المراهقة/الأطفال بمجرد إثبات السلامة
  • توفر علاجات مبتكرة يُعتقد أنها أكثر فعالية من الخيارات الحالية كعلاج خط أول في أشكال المرض العدوانية
  • النظر في اعتماد استراتيجيات علاج متسلسلة نظرًا لتنوع مسار المرض واستجابة العلاج داخل بعض الأمراض المرتبطة بالمكمل

الاختبارات الجينية والفحص

  • الآراء والتفضيلات بشأن الفحص والاختبار الجيني متغيرة للغاية بين المرضى
  • يريد بعض الأفراد معرفة أكبر قدر ممكن عن مرضهم، خاصة إذا كان التشخيص المبكر يمكن أن يؤدي إلى نتائج أفضل
  • البعض الآخر لا يريد، خاصة إذا كانت المعرفة غير قابلة للتنفيذ
  • ما إذا كانت وكيف يمكن أن تؤثر النتائج الجينية على التأمين أو أهلية الزرع
  • المعلومات الدقيقة حول وفهم المخاطر المرتبطة بالمتغيرات الجينية للمرض أمر بالغ الأهمية
  • من غير المرغوب فيه استبعاد زراعة الأعضاء من الأقارب الأحياء أو الخضوع لاختيار الأجنة بسبب أليل من غير المحتمل أن يسبب المرض
  • يعد الاستشارة الجينية المناسبة والمبنية على معلومات جيدة أمرًا حيويًا، حيث يمكن أن يعاني الآباء من عبء نفسي كبير إذا قيل لهم إنهم نقلوا متغيرًا جينيًا ضارًا إلى طفلهم

خزعة متكررة في سياق تجربة سريرية

  • بشكل عام، يتردد المرضى في الخضوع لخزعات متكررة، خاصة في سياق متلازمة انحلال الدم اليوريمي غير النمطية، حيث قد يكون ذلك أكثر خطورة وحيث يتم تأسيس معايير موثوقة أخرى لاستجابة العلاج (مثل عدد الصفائح الدموية، إنزيم اللاكتات ديهيدروجيناز، ومستوى الكرياتينين في المصل)
  • ومع ذلك، خاصة في الأمراض الكبيبية ذات نقاط النهاية الفعالية الأقل وضوحًا وتقدم المرض بشكل أكثر تدريجي، يدرك المرضى ومقدمو الرعاية الحاجة إلى إثبات نسيجي لوكيل علاجي يؤثر على تقدم المرض وقد يكونون متحمسين للتعاون في تطوير، من خلال بيانات من خزعات متكررة، طرق تشخيص غير جراحية (مثل تقنيات التصوير الجديدة، علامات حيوية تشخيصية محسنة، وطرق خزعة سائلة)
    على وجه الخصوص، العدوى بالبكتيريا المغلفة (حيث قد يتم النظر في التطعيم و/أو المضادات الحيوية الوقائية لمثبطات المسار البديل والنهائي).

اعتلال الكلى الغشائي

التهاب الكلى الغشائي الأولي (MN) مدفوع بإنتاج الأجسام المضادة الذاتية وتكوين معقدات مناعية في الموقع، يتبعه تنشيط المكمل. في نماذج الحيوانات التجريبية للالتهاب الكلوي، يعتبر تنشيط المكمل بعد ترسب المعقدات المناعية ضروريًا لتطور إصابة الخلايا الظهارية الكلوية والبيلة البروتينية، على الرغم من أن دوره بعد إزالة المعقدات المناعية غير معروف. في التهاب الأوعية الدموية الأولي، تم اعتبار تفعيل المسارات الأخرى غير الكلاسيكية هو السائد، حيث يكون C1q عادة غائبًا أو ضئيلًا. ال
وجود العامل C 3 ويدعم وجود البروتين المناسب من خلال صبغة المناعة في خزعة الكلى دور المسار البديل. عادة ما يتم العثور على C3 (و C4 عند قياسه) بالاقتران مع IgG في الرواسب تحت الظهارية من خلال صبغة المناعة. بالإضافة إلى بيانات خزعة الإنسان، تشير البيانات التجريبية الحديثة إلى دور C 3 a و C 3 aR و C 5 aR في الخلايا الظهارية الأولية. فيما يتعلق بمسار الليكتين، يتم العثور على الليكتين المرتبط بالمانان في نمط ترسيب جدران الشعيرات الدموية الدقيقة النموذجية في خزعات الكلى الأولية. في المختبر، يمكن لجسم مضاد IgG4 البشري ضد مستقبل الفوسفوليباز A2 الذي يفتقر إلى الجالاكتوز المرتبط بالنهاية N أن يرتبط بالليكتين المرتبط بالمانان وينشط مسار الليكتين مما يسبب إصابة الخلايا البودوسيت.
تظهر معظم خزعات الغدد اللمفاوية الأولية تلوينًا قويًا لـ IgG4 و C3 بواسطة التألق المناعي، مع وجود حد أدنى من C1q.
الجدول 3 | الأسئلة الرئيسية واحتياجات البحث المتعلقة بمشاركة المكملات في أمراض الكلى (الأولويات القصوى مميزة بالخط العريض)
شرط فجوات معرفية هامة وأسئلة رئيسية استراتيجيات البحث والترجمة المحتملة
اعتلال الكلى السكري
– دور ارتفاع سكر الدم في تنشيط المكمل
– العلاقة بين منتجات تنشيط المكمل وشدة المرض/النتائج
– بيانات النتائج حول العلاجات المساعدة في المرضى الذين يعانون من اعتلال الكلى السكري أو متلازمة الكلى الفطرية
– دراسات سريرية سلة أو منصة في اعتلال الكلى السكري و FSGS للمرضى الذين يتقدمون بسرعة على الرغم من العلاج الأمثل وفقًا للإرشادات
– مع بنك شامل للعينات
– تحليل مركز لجينات مسار المكمل والأمراض
التصلب الجلدي البؤري
– تحسين توصيف تباين المرض والمجموعات الفرعية
– العلاقة بين المؤشرات الحيوية المرتبطة بالمكملات وتقدم المرض
– استخراج الدراسات الشاملة الحالية لعينات الأنسجة، النسخ الجيني، الإيبيجينوم، البروتيوم، الميتابولوم، “كومبليمنتوم” (علم الأوميات المتعلق بالمكملات)
ذئبة – سواء كان قياس منتجات تنشيط المكملات في البلازما والأنسجة والبول يمكن أن يساهم في توجيه العلاج
– تحديد دور الإكوليزوماب في اعتلال الأوعية الدقيقة المرتبط بالذئبة وفي التهاب الكلى من النوع الخامس
– توضيح مساهمة مسار مكمل اللكتين في مسببات الذئبة
– تطوير مؤشرات حيوية بولية للشفاء من التهاب الكبيبات
APS – أدوات سريرية لتقييم تنشيط المكمل
– تجربة المرضى الذين تم علاجهم بتثبيط C5 للأشكال الوعائية والنسائية من APS
– النظر في استخدام علاجات حجب المكملات طويلة الأمد (مثبطات C5) للمرضى ذوي المخاطر العالية لحدوث تجلطات متكررة مثل المرضى الثلاثي الإيجابية (المرضى الذين لديهم الأجسام المضادة IgG aPL في المصل إيجابية و نتيجة اختبار إيجابية لوذمة الأوعية الدموية الذاتية (الذئبة الحمراء) مع وجود مضاد التخثر، الذين هم في خطر متزايد للإصابة بالجلطات رغم العلاج الجيد بمضادات التخثر
– تجارب العلاج قصير الأمد للحالات عالية المخاطر مثل إصابة الأوعية الدموية
AAV
– سواء كانت مؤشرات المكملات يمكن استخدامها لـ:
– تحديد المرضى الذين من المحتمل أن يستفيدوا من العلاج
– تحديد غير المستجيبين
– جرعة الإرشاد ومدة العلاج
– دور العلاج الموجه نحو المكملات في أمراض الكلى الشديدة، التهاب الكلى المناعي القليل الأجسام المضادة السلبي، الأعراض خارج الكلوية، ومرض الهواء الحبيبي
– المدة المثلى للعلاج والدور في العلاج الصMaintenance (بمفرده أو بالاشتراك مع عوامل أخرى)
– دور C5aR في تحفيز المناعة الذاتية
– سواء كان تثبيط أو حذف C5aR2 يؤدي إلى تفاقم المرض في نماذج الحيوانات؛ الدراسات السريرية جارية (إنفلا راكس: NCT03712345)
“- المخاطر والفوائد النسبية لاستهداف مكونات مكمل أخرى (لا تأثير لتثبيط C5b-9 في نماذج الحيوانات) )
– سواء كان حجب C5aR1 أو علاجات موجهة أخرى للنظام المكمل تقلل من خطر التخثر أو المخاطر القلبية الوعائية في AAV
– استخدام بيانات التجارب السريرية والعينات البيولوجية لتقييم علم الأمراض النسيجي للكلى وعلامات المكملات الطولية في التنبؤ باستجابة العلاج، وخاصة مستويات C5a في البلازما لدى المرضى المعالجين بالأفاكوبان
– دراسات المراقبة بعد الترخيص حول السلامة على المدى الطويل، خطر الانتكاس، وتقدم مرض الكلى
– دراسات النتائج العشوائية والملاحظة (مع تحليل العلامات الحيوية) التي تقيم مظاهر الأمراض المحددة عندما يكون معدل الترشيح الكبيبي التقديري (eGFR) لكل
إيجان، إيجافن
– سواء كان دور أو مساهمة المكمل هو نفسه في:
– البالغين والأطفال
– أشخاص من أعراق أو أصول متنوعة
– الكبيبات والأنبوب البيني
– طوال فترة المرض
MN
– تحديد أفضل علامة حيوية للتكامل لتقييم تنشيط التكامل المستمر في MN
– سواء كان هناك دور مساعد لتثبيط المكملات بالإضافة إلى علاجات استنزاف خلايا B
– تحديد المؤشرات الحيوية غير الغازية (البلازما، البول) للتفعيل المستمر لنظام المتمم داخل الكبيبات
– توضيح الآليات السائدة لإصابة خلايا البودوسيت وخلايا الكلى الأخرى (مثل خلايا الأنابيب) الناتجة عن التكامل خلال التاريخ الطبيعي للمرض، بما في ذلك بعد اختفاء الأجسام المضادة الذاتية المتداولة
– تقييم الوقت الأمثل لبدء علاج المكملات في التاريخ الطبيعي لمرض MN وبالنسبة لوجود/مستوى الأجسام المضادة الذاتية المتداولة
الجدول 3| (مستمر)
شرط فجوات معرفية هامة وأسئلة رئيسية استراتيجيات البحث والترجمة المحتملة
– استكشاف ما إذا كانت هناك أجسام مضادة ذاتية لمُنظِّمات التكامل التي تفاقم الإصابة الناتجة عن التكامل في الكلى لدى بعض أو جميع المرضى الذين يعانون من MN
– قياس تأثير تثبيط المكمل على مستويات الأجسام المضادة الذاتية والعكس في MN الأولية
أشكال متلازمة انحلال الدم اليوريمي المرتبطة بالملحق
– المصطلحات والطيف من الكيانات التي يجب اعتبارها كأمراض الكلى المرتبطة بالتحفيز بواسطة المكملات
– سواء كان هناك فائدة من تثبيط C5 في HUS تختلف عن اعتلال الأوعية الدموية الكلوية/ HUS الناتج عن تكامل المكمل الأساسي
– اختبار تشخيصي موثوق وسهل التنفيذ لمرض HUS غير النمطي
– تقييم دور المثبطات المستهدفة للإنزيم البديل C3 في علاج متلازمة انحلال الدم اليوريمي الناتجة عن تكامل المتممات
– دور الآليات غير التكميلية لإصابة خلايا البطانية في اعتلال الأوعية الدموية الناتج عن التكامل
– أهمية الأجسام المضادة الذاتية عالية العيار ضد العامل H في المرضى الذين لا تظهر عليهم علامات سريرية للـ TMA
– دور تثبيط المكملات في متلازمة انحلال الدم اليوريمي الناتجة عن الإشريكية القولونية المعوية الشديدة
– تقييم الأثر الدقيق للمكمل (احتمال كضربة ثانية) في TMAs الثانوية
– تحديد العلامات الحيوية ذات القيمة التنبؤية السلبية و/أو الإيجابية الموثقة للتشخيص، ومراقبة العلاج، و/أو تقييم الانتكاسة بعد توقف العلاج
– تصميم وإجراء تجارب سريرية مستقبلية مع مثبطات المكملات في اعتلال الأوعية الدقيقة الكلوي الثانوي
– توحيد اختبارات الأجسام المضادة لعامل H
– تقييم النتائج طويلة الأمد لتكرار حالات متلازمة انحلال الدم اليوريمي غير النمطية
– تحديد عوامل تنبؤية إضافية للانتكاسة بعد التوقف عن العلاج
IC-MPGN و C3G
– التصنيف النسيجي المرضي: هل يبرر التمييز بين C3G و IC-MPGN من الناحية الفيزيولوجية المرضية، نظرًا لأن الأسباب الكامنة متطابقة في الأشكال الأولية؟
– تحسين توصيف تباين المرض والمجموعات الفرعية
– دور C3NeFs في التسبب في الأمراض
– دور تثبيط المناعة في C3G، خاصة بالمقارنة مع تثبيط المكمل
– تسمية موحدة للمتغيرات الجينية النادرة غير المندلية
– فائدة تحديد الأجسام المضادة الذاتية ضد C3b وFB وFH للتشخيص والعلاج
– استخدم تجربة سريرية على منصة (تكيفية) لتقييم فعالية وأمان مثبطات المكملات الجديدة
– استكشاف استراتيجيات لتحديد مجموعات من المرضى ذوي الأسباب المتجانسة
– تبسيط وتوحيد اختبارات C3NeF و C5NeF
– استكشاف الأهمية التنبؤية للبيانات السريرية والنسجية وبيانات المؤشرات الحيوية للتنبؤ بالنتائج واستخدامها كنقاط نهاية بديلة
– إجراء تجارب وظيفية لتقييم تأثير المتغيرات الجينية المحتملة الضارة
– قياس تأثيرات مخاطر الأمراض الناتجة عن المتغيرات الجينية / C3NeFs / الأجسام المضادة الذاتية الأخرى
AAV، التهاب الأوعية الدموية المرتبط بالأجسام المضادة السيتوبلازمية المضادة للعدلات (ANCA)؛ aPL، مضاد الفوسفوليبيد؛ APS، متلازمة الأجسام المضادة المضادة للفوسفوليبيد؛ C3G، اعتلال الكبيبات الناتج عن مكون التكمل 3؛ C5aR، مستقبل C5a؛ C5b-9، مركب الهجوم الغشائي؛ eGFR، معدل الترشيح الكبيبي المقدر؛ FB، العامل B؛ FH، العامل H؛ FSGS، تصلب الكبيبات البؤري القطاعي؛ HUS، متلازمة انحلال الدم اليوريمي؛ IC-MPGN، التهاب الكبيبات المناعي المعتمد على المجمعات؛ IgAN، اعتلال الكلى IgA؛ IgAVN، التهاب الأوعية الدموية المرتبط بـ IgA مع التهاب الكلى؛ LN، التهاب الكلى الذئبي؛ MN، اعتلال الكلى الغشائي؛ NeF، عامل التهاب الكلى؛ RCT، تجربة سريرية عشوائية محكومة؛ STEC، الإشريكية القولونية المنتجة للسموم شيجا؛ TMA، الميكروأوعية الدموية التخثرية.
مقترحًا مسارات مشابهة لتنشيط التكمل في الأنماط الفرعية المختلفة للمرض (على الرغم من أن نمطًا فرعيًا واحدًا من MN الأولي المرتبط بالأجسام المضادة للبروتوكاديرين-7 يبدو أنه يظهر تلوينًا ضئيلًا لـ C3 ). عندما تكون هناك أدلة على تنشيط المسار الكلاسيكي موجودة في خزعة (C1q ملحوظ، غالبًا مع هيمنة من الفئات الفرعية غير IgG4 من IgG)، يجب النظر في سبب ثانوي (مثل، مرض مناعي ذاتي نظامي، عدوى، سرطان، أو تعرضات). ومع ذلك، أظهرت دراسة مؤخرًا أنه، بينما يكون C1q ضئيلًا بالفعل في الفحص المناعي الروتيني لنسج خزعة MN، يمكن أن يصبح قابلًا للاكتشاف بسهولة عندما تخضع الأنسجة المثبتة بالفورمالين لاسترجاع المستضد، مما يكشف C1q. تحتاج هذه النتيجة، التي تقترح أن تنشيط المسار الكلاسيكي قد يكون أكثر شيوعًا في MN مما كان يُعتقد سابقًا، إلى مزيد من الدراسة.

الآثار السريرية

تشير الأدلة الحالية بوضوح إلى أن المسارات البديلة، والليكتين، وربما أيضًا المسارات الكلاسيكية للتكمل تلعب دورًا في دفع MN الأولي، ولكن لم يتم التحقق من أي مؤشرات حيوية للتكمل. تجري التجارب السريرية من المرحلة الثانية تقييم تثبيط التكمل
C3، المسار البديل، وتثبيط مسار الليكتين في MN (انظر الجدول 1). في MN الأولي، قد يكون استهداف مسارات الليكتين والبديل مناسبًا، بينما قد يكون تثبيط المسار الكلاسيكي مفيدًا في إدارة الأشكال الثانوية من MN. تشير ملاحظة حديثة لحدوث MN أولي متكرر في مريض يتلقى الإكوليزوماب لعلاج نقص عامل التكمل Ideficient aHUS إلى أن استهداف المسار النهائي قد لا يكون له فعالية كبيرة.

الذئبة الحمراء الجهازية (SLE)

في SLE، تسبب آليات فعالة متعددة التهاب الكبيبات. استنادًا إلى بيانات نماذج حيوانية، تقوم المجمعات المناعية بتحفيز التهاب الكبيبات من خلال ارتباط مستقبل Fc وتنشيط المسارات الكلاسيكية والنهائية، على الرغم من أن المسار البديل هو الذي يدفع الكثير من تلف الكلى. يرتبط تنشيط التكمل أيضًا بالتظاهرات خارج الكلى. بشكل متناقض، قد تؤدي نقص التكمل الخلقي، بشكل رئيسي من C1q وC4، إلى تطوير SLE. تفسير هذه العلاقة من حيث الشذوذات في المسار الكلاسيكي يمثل مشكلة، حيث إن نقص C3 لا يهيئ
لـ SLE. ومع ذلك، يقوم Clq بتعديل الأيض الميتوكوندري لـ CD8+ T cells، مما يخفف من الاستجابة للمستضدات الذاتية. قد يفسر هذا الرابط بين Clq و -أيض الخلايا كيف يحمي C1q من الذئبة وله آثار على دور العدوى الفيروسية في استمرار المناعة الذاتية. تعتبر مستويات التكمل الدائرية المنخفضة (C3 وC4) بسبب تنشيط التكمل الواسع مرتبطة بنشاط المرض ومدرجة في درجات نشاط المرض الشائعة. بالإضافة إلى ذلك، يتم التحقيق في منتجات انقسام التكمل في البلازما ومنتجات تنشيط التكمل المرتبطة بالخلايا، وهي، C4d المرتبطة بكريات الدم الحمراء و المرتبطة بالخلايا كعلامات حيوية واعدة لنشاط المرض ولتظاهرات محددة من SLE.

الآثار السريرية

تتنبأ مستويات C3 وC4 الدائرية المنخفضة بالاستجابة للبليموماب، وقد ارتبطت عودتها المبكرة إلى الوضع الطبيعي بالاستجابة الكلوية في بيئات التجارب، على سبيل المثال، دراسة إدارة الذئبة أسبريفا. يعتبر قياس عيار الأجسام المضادة المضادة لـ C1q ذا قيمة في تشخيص متلازمة التهاب الأوعية الدموية الشريانية الحادة ذات التكمل المنخفض. هناك تقارير حالة عن استخدام الإكوليزوماب في التهاب الكلى الذئبي وفي الميكروأوعية الدموية التخثرية (TMA) الثانوية للذئبة. ومع ذلك، فإن تعقيد تفسير هذه التقارير الحالة هو وجود تعدد أشكال شائع في C5، Val802Ile (rs17611؛ 9-121006922-C-T [GRCh38])، مما يجعل C5 Val802 أكثر حساسية للتفكك بواسطة الإيلاستاز العدلي وبروتيازات أخرى عادةً لا تُعتبر متورطة في نشاط التكمل. النتيجة هي توليد شظايا شبيهة بـ C5a وظيفية تدفع الالتهاب. من المهم أن هذا التفكك غير المستهدف لـ C5 بواسطة الإيلاستاز لا يتم تثبيطه بواسطة الإكوليزوماب. تجري تجربة سريرية لـ ravulizumab (أجسام مضادة أحادية النسيلة مضادة لـ C5) (NCT04564339).
هناك العديد من التقارير التي تقيم شظايا تنشيط التكمل كعلامات حيوية سريرية في SLE. ومع ذلك، فإن هذه الاختبارات ليست متاحة بشكل روتيني وتتطلب معالجة دقيقة للعينة لتجنب النتائج الخاطئة بسبب تنشيط التكمل خارج الجسم. كما أنه ليس من الواضح ما القيمة الإضافية التي ستضيفها إلى العلامات المصلية المتاحة على نطاق واسع لنشاط المرض (عيار الأجسام المضادة لـ DNA مزدوج الشريطة، مستويات C3 وC4). قد تكون بعض اختبارات التكمل ذات فائدة سريرية عند استخدام مثبطات التكمل. على سبيل المثال، قد يساعد الاستخدام الأمثل للإكوليزوماب/رافوليزوماب في تحديد ما إذا كان قد تم تحقيق تثبيط كامل لتنشيط C5 في البلازما (على سبيل المثال، من خلال اختبارات تنشيط C5) وما إذا كان هناك دليل على تثبيط C5 في خزعة الكلى (على سبيل المثال، من خلال التلوين لـ C5b-9 وكمية الخلايا الالتهابية). كان لدى المشاركين في الاجتماع تحفظات بشأن تثبيط C3 في SLE بسبب دور C3 في الإزالة الفسيولوجية للمجمعات المناعية وبشأن تثبيط المسار الكلاسيكي بسبب الارتباط القوي بين نقص كامل لبروتينات المسار الكلاسيكي ومتلازمات شبيهة بالذئبة. لن يُتوقع حدوث تفاعلات سلبية بين مثبطات التكمل والعلاج القياسي الحالي للذئبة، بما في ذلك استنفاد خلايا B باستخدام أجسام مضادة مضادة لـ CD20.

متلازمة الأجسام المضادة المضادة للفوسفوليبيد (APS)

يُعتبر التكمل متورطًا في مسببات 3 أشكال من APS الأولي (الأوعية، والتوليد، والكوارث). تم الإبلاغ عن ترسب التكمل في جدران الأوعية، وهناك أدلة على تنشيط المسار الكلاسيكي في APS الأولي، والذي يحدث حتى في APS الهادئ (أي، بعيدًا عن الحدث التخثري). لا توجد أدلة واضحة على وجود علاقة بين التكمل في البلازما والتظاهرات الوعائية. ومع ذلك، أظهرت دراسة صغيرة واحدة أن مستويات C5a وsC5b-9 العالية باستمرار في APS الهادئ مرتبطة بزيادة خطر تكرار الأوعية وقد تحدد المرضى الذين قد يستفيدون من تثبيط التكمل. من الجدير بالذكر أنه في APS التوليدي، أظهرت سجلات متعددة المراكز أن مستويات C3 وC4 المنخفضة قبل الحمل كانت مرتبطة بنتائج الحمل السلبية، وأظهرت دراسة متعددة المراكز أخرى أن زيادة مستويات Bb وsC5b-9 في بداية الحمل تنبأت بقوة بنتائج الحمل السلبية. تم استخدام الإكوليزوماب في APS الكارثية، مع تقارير عن تحسن في بعض الحالات. من الصعب تقييم أدلة الفعالية حيث يتم استخدام الإكوليزوماب مع العلاجات المصاحبة، مثل الغلوبولين المناعي الوريدي، وتبادل البلازما، أو السيكلوفوسفاميد. تم أيضًا استخدام الإكوليزوماب لمنع إعادة التخثر بعد الجراحة في APS.

الآثار السريرية

في APS الكارثية، قد يكون استخدام مثبطات التكمل خيارًا علاجيًا مناسبًا، وتم إدراج الإكوليزوماب كخيار علاج في توصيات إرشادات التحالف الأوروبي لجمعيات الروماتيزم. سيزيد حجب التكمل من خطر العدوى، ونظرًا لأن العدوى تعتبر محفزًا للأحداث الوعائية في APS، قد يكون من الحكمة اتخاذ تدابير وقائية بالمضادات الحيوية. تعد التجارب السريرية للعلاج المضاد للتكمل في الأشكال الثلاثة من APS تحديًا كبيرًا وستحتاج إلى تصميم مبتكر لتحقيق استنتاجات قوية. لا توجد أدلة على أن تثبيط التكمل سيتداخل مع آلية عمل العلاجات المضادة للتخثر، التي تعتبر الأساس في إدارة APS.

التهاب الأوعية الدموية المرتبط بـ ANCA

تشير الأدلة السابقة الموصوفة في المختبر، وفي الجسم الحي، والسريرية إلى أن تنشيط المكملات يلعب دورًا في تطور التهاب الأوعية الدموية المرتبط بالتهاب الكلى. باختصار، هناك دليل على تنشيط المسارات البديلة والنهائية في AAV مع تلوين كبيبات الكلى لـ FB وproperdin ومجمع الهجوم الغشائي وC3d. وزيادة مستويات البلازما من C3a وC5a وBb في المرض النشط. في نموذج الفأر لالتهاب الكلى المرتبط بمضاد المايلوبيروكسيداز، منع نقص FB أو C5 المرض، في حين أن نقص C4 لم يكن له تأثير ملحوظ. تشير هذه النتائج إلى أن المسارات البديلة والنهائية، ولكن ليس المسارات الكلاسيكية ومسارات اللكتين، مطلوبة لتحفيز المرض. أظهرت دراسات إضافية في نموذج فأر لمرض AAV المرتبط بمضاد الميالوبيروكسيداز أنه، بينما تم منع التهاب الكبيبات إما عن طريق نقص مستقبلات C5a أو حجب مستقبل C5a المعتمد على الإنسان باستخدام الأفاكوبان، لم يكن لنقص C6 أي تأثير. تشير هذه النتيجة إلى أن إنتاج C 5 a و
التفاعل مع مستقبل C5a وليس مع معقد الهجوم الغشائي هو الذي يقود التهاب الكبيبات. أظهرت الدراسات في المختبر أن تنشيط الخلايا المهيأة (أي، عامل نخر الورم- عولجت الخلايا المتعادلة مع ANCA (إما الميالوبيروكسيداز أو البروتيناز 3) مما أدى إلى توليد C 5 a. في المقابل، قام C5a بتحضير العدلات للتفعيل الناتج عن ANCA بطريقة تعتمد على مستقبلات C5a. وعند جمعها، قدمت هذه البيانات الأساس للتحقيق في فعالية حجب C5a ومستقبلات C5a في AAV.

الآثار السريرية

تدعم بيانات التجارب السريرية استخدام الأفاكوبان (حجب C5aR1) كعلاج يقلل من استخدام الستيرويدات في التهاب الأوعية الدموية المرتبط بالتهاب الكبيبات (التهاب الأوعية الدموية مع التهاب حبيبي والتهاب الأوعية الدموية المجهرية؛ الجدول التكميلي S1). العلاج يتم تحمله بشكل جيد ويسمح بسحب الجلوكوكورتيكويد، وهو فائدة كبيرة للمرضى. تشير بعض الأدلة إلى أن علاج الأفاكوبان يحسن استعادة معدل الترشيح الكبيبي المقدر (eGFR) ومستوى الألبومينوريا، على الرغم من الحاجة إلى مزيد من التأكيد. كما أنه غير واضح ما إذا كان حجب C5aR1 (أو أي علاج موجه لمكمل آخر) يقلل من خطر التخثر أو المخاطر القلبية الوعائية. تعتبر الاعتبارات الرئيسية هي المدة المثلى للعلاج ودوره في الصيانة (بمفرده أو بالاشتراك مع عوامل أخرى)، بالإضافة إلى دور C5aR في تحفيز المناعة الذاتية. حالياً، يتم استخدام الأفاكوبان بالاشتراك مع نظام ريتوكسيماب أو سيكلوفوسفاميد لعلاج المرضى البالغين الذين يعانون من مرض شديد، وهناك حاجة إلى دراسات لتحديد المجموعات المثلى من المرضى ومراحل المرض. الدراسات السريرية لكتلة C5a باستخدام جسم مضاد مضاد لـ C5a (فيلوبليماب) جارية (إنفلا راكس: NCT03712345؛ الجدول 1). لا يزال غير واضح مدى فائدة مؤشرات المكملات في التنبؤ بالاستجابة للعلاج أو توجيه الجرعة أو مدة العلاج. كما أن دور العلاج الموجه للمكملات في أمراض الكلى الشديدة، والتهاب الكلى المناعي القليل ANCA-negative، والتظاهرات خارج الكلوية، ومرض الهواء الحبيبي غير واضح أيضاً.

TMAs، أشكال HUS المدعومة بالمكملات – المصطلحات

تحتاج المصطلحات الحالية للـ HUS غير النمطية، الأولية، والثانوية إلى تحديث لأنها مربكة ولا تعكس الآلية المرضية. قامت مؤسسة الكلى الوطنية مؤخرًا بمراجعة طيف الحالات المرتبطة بالـ TMA واقترحت نهجًا تشخيصيًا يجب أن يعكس في المثالي الآليات المرضية الأساسية، ودور المكملات والعوامل المحفزة الأخرى، والاستجابة لحجب المكملات. يجب ألا تؤثر المصطلحات الجديدة سلبًا على الوصول إلى مثبطات المكملات أو تعويضها.

مشاركة المكملات والمرضية المرتبطة بها

تشير الأدلة الحالية بقوة إلى أن اختلال تنظيم المسارات البديلة والنهائية يقود معظم أشكال متلازمة الانحلال الدموي اليوريمي. بالإضافة إلى اختلال تنظيم المكمل، هناك العديد من الأسباب الأخرى.
بما في ذلك نقص كيناز الدياسيلغليسيرول-ɛ (DGKe)، نقص الكوبالامين-C، الإنترفيرون الإدارة، وتثبيط عامل نمو البطانة الوعائية، لهما أدوار آلية في دفع نمط TMA الكلوي. TMAs التي تتوسطها DGKe وMMACHC (حمض الميثيلمالونيك [نقص الكوبالامين] من النوع cblC، مع فرط الهوموسيستين) غير مستجيبة لتثبيط C5. لا يُعرف ما إذا كان الإنترفيرون- وتستجيب TMAs المعتمدة على تثبيط عامل نمو بطانة الأوعية الدموية لتثبيط C5.
يمكن أن تساعد المؤشرات الحيوية (مستويات المكملات والاختبارات الوظيفية؛ الجدول التكميلي S3)، واكتشاف الأجسام المضادة الذاتية ضد العامل H (FH)، وعلم وراثة المكملات في تمييز تنشيط/خلل المكملات المؤقت مقابل الدائم في سياقات محددة. قد يكون تنشيط المكملات ذاتيًا. عدم تنظيم AP الدائم لا يعني بالضرورة تنشيطًا دائمًا يتطلب علاجًا مستمرًا. قد يكون تنشيط المكملات حدثًا يسبب TMA، أو عاملًا معززًا، أو منتجًا ثانويًا. من غير الواضح ما إذا كان هذا التمييز سيكون مفيدًا لإعادة تصنيف TMA/HUS. ومع ذلك، قد يكون مفيدًا للإدارة طويلة الأمد للمرضى، لا سيما في تحديد مدة تثبيط المكملات.

المؤشرات الحيوية

أبرز التقرير من مؤتمر الجدل لعام 2015 الحاجة إلى مؤشرات حيوية محددة يمكن أن تساعد في تشخيص ومراقبة أشكال HUS (TMA) التي تتوسطها المكملات. حتى الآن، لا يوجد علامة حيوية تشخيصية متاحة عالميًا لـ aHUS. يعتمد التشخيص السريري على استبعاد حالات أخرى. ومع ذلك، يمكن تحديد شكل مناعي ذاتي من TMA المعتمد على المكملات في المرحلة الحادة من خلال وجود الأجسام المضادة الذاتية المضادة للمكمل FH. من المهم أن تكون مؤشرات المكملات مفيدة في تحديد العامل المسبب المعني (الجدول التكميلي S3).
حتى الآن، لم يتم التحقق من أي علامة حيوية قادرة على تحديد اختلال تنظيم مكمل AP في سياق HUS للاستخدام السريري في إدارة المرضى واختيار المرشحين لكتلة C5 عند بداية المرض. لا يستبعد ملف مكمل الدم الطبيعي وجود HUS mediated by complement. ومع ذلك، فإن العلامات الحيوية/الاختبارات مفيدة لمراقبة تثبيط المكمل وخطر الانتكاس (مثل اختبار مكمل الدم الكلي [CH50]، C5 الحر، sC5b-9، الأجسام المضادة الذاتية antiFH). في الممارسة الروتينية، يتم استخدام CH50 ومستويات الإكوليزوماب في القاع فقط لتقييم درجة كتلة المكمل النهائية. تم اقتراح اختبارات جديدة تم تطويرها، مثل الاختبارات المعتمدة على الخلايا ex vivo (اختبار خلايا الأوعية الدقيقة الجلدية البشرية-1 واختبار هام المعدل)، لتشخيص ومراقبة أشكال TMA المعتمدة على المكمل. تتطلب هذه الاختبارات مزيدًا من التحقق قبل تنفيذها في العيادة. علاوة على ذلك، تظل قضية ملحة تتمثل في الحصول على جرعات موحدة وقابلة للمقارنة من الأجسام المضادة الذاتية المضادة لـ FH، والتي يصعب حاليًا تنسيقها وإعادة إنتاجها بين مختبرات مختلفة.

علم الوراثة

تُدرج الفحوصات الجينية وفحص الأجسام المضادة الذاتية في المرضى الذين يُشتبه في إصابتهم بمتلازمة انحلال الدم اليوريمي المرتبطة بالتكامل في الجدول التكميلي S4. يجب تفسير النتائج الجينية المتعلقة بالتكامل (الطفرات الشائعة والنادرة، تغييرات عدد النسخ، إلخ) من قبل مختبر لديه خبرة في الأمراض المرتبطة بالتكامل. يجب استخدام مصطلح “طفرات” بدلاً من “تحورات”، مع تصنيف الطفرات المحددة على أنها مسببة للأمراض/محتملة التسبب في الأمراض، أو ذات دلالة غير مؤكدة، أو حميدة/محتملة أن تكون حميدة (الجدول التكميلي S5). تمتلك متلازمة انحلال الدم اليوريمي غير النمطية نفاذية متغيرة (منخفضة)، وتعتبر الطفرات النادرة في جينات التكامل عوامل مسببة فقط للمرض. يزداد خطر تطوير المرض مع زيادة عدد عوامل الخطر الجينية ويتأثر بـ (عامل التكملة H ) و أنماط الخطر الجينية لبروتين المساعد الغشائي.
يمكن أن تحلل الجينات تصنيف خطر تكرار/عودة aHUS بعد توقف العلاج وزراعة الكلى (الشكل التوضيحي التكميلي S1). في تقرير مؤتمر 2015، يجب اعتبار المتبرعين بالكلى المرتبطين فقط إذا كان المتبرعون خالين من أي عوامل وراثية (أو مكتسبة) مسببة تم تحديدها في المتلقي. إن غياب متغيرات جينية ممرضة في الجين المكمل في الحالة الأساسية والمتبرع المحتمل ليس مانعًا من التبرع بالكلى. بالإضافة إلى ذلك، المتبرع أو أنماط الخطر aHUS ليست موانع للتبرع. حاملو الطفرات المسببة للأمراض في نظام المكمل الصحيين معرضون لخطر تطوير aHUS بعد التبرع بالكلى. يمكن أن تساعد التحليلات الجينية في تصنيف خطر تطور المرض لدى هؤلاء المتبرعين.
قد تفسر تعدد أشكال C5 المقاومة للتثبيط باستخدام الإكوليزوماب والرافوليزوماب، ولكن هذه الحالات نادرة جدًا ومقيدة بشكل رئيسي بالسكان الآسيويين. تؤثر اكتشاف الأجسام المضادة الذاتية ضد FH على الإدارة الأولية لـ aHUS (مزيج من تبادل البلازما و/أو مثبط المكمل و/أو الأدوية المثبطة للمناعة). يمكن أن يساعد تطور الأجسام المضادة الذاتية ضد FH في تصنيف خطر تكرار/انتكاس المرض بعد توقف العلاج أو زراعة الكلى. تظل إدارة المرضى الذين لديهم مستوى مرتفع باستمرار من الأجسام المضادة الذاتية ضد FH دون مظاهر سريرية لـ TMA موضع جدل.

العلاج

متاح حاليًا. يعتبر تثبيط C5، عند توفره، هو العلاج القياسي الذهبي للأشكال المعتمدة على المكمل من aHUS. توقيت العلاج مع الاستخدام السريع لتثبيط C5 أمر حاسم للنتائج القصيرة والطويلة الأجل؛ ومع ذلك، فإن تشخيص الحالة لا يزال تحديًا، ويجب بدء العلاج دون انتظار نتائج الفحص الجيني. في البلدان التي تفتقر إلى الوصول إلى مثبطات المكمل، يجب النظر في وصف تبادل البلازما بسرعة. في معظم المراكز، تُستخدم أدوية مضادة لـ C5 كوقاية للمرضى المعرضين لخطر مرتفع من التكرار بعد زراعة الكلى. ومع ذلك، يمكن النظر في استراتيجيات بديلة، بما في ذلك التبرع الحي مع بروتوكول لتقليل إصابة البطانة.
أو زراعة كبد وكلى مشتركة. من الجدير بالذكر أن الحمل/ما بعد الولادة-HUS، والذي يُعتبر تشخيصًا استبعاديًا، يُعتبر ضمن طيف TMA المعتمد على المكمل في الكلى، وبالتالي يجب علاجه باستخدام تثبيط C5.
الناشئة. بالنسبة للمرحلة الحادة و/أو مرحلة الشفاء، تتوفر أو قيد التطوير مجموعة متنوعة من مثبطات C5، بما في ذلك الأجسام المضادة، والـ RNA الصغيرة المتداخلة، والأدوية قصيرة وطويلة المفعول مع طرق متعددة للإدارة. استهداف المسار البديل عند مستوى تنشيط C3/FB/تثبيط العامل D هو بديل محتمل (الجدول 1؛ الشكل 3). بشكل عام، نظرًا لشدة المرض، يجب أن يقتصر استخدام أي عوامل ناشئة بشكل أساسي على الحفاظ على الشفاء حتى يتم إثبات عدم تفوقها على الإكوليزوماب بوضوح في المرحلة الحادة. تظهر البيانات الحالية (الجدول التكميلي S1) فعالية الرافوليزوماب عند البداية وفي مرحلة الصيانة، خاصة في الأطفال. ; في البالغين، كانت النتائج أقل وضوحًا، ربما لأن السكان المدروسين قد شملوا مرضى لم يكن لديهم aHUS أولي. ومع ذلك، في المرحلة الحادة، قبل أن يتم تأكيد تشخيص aHUS المعتمد على المكمل، يثير استخدام تثبيط المكمل طويل المفعول (أي الرافوليزوماب والكروليماب) القلق.
وقف العلاج. بمجرد تحسن وظيفة الكلى واستقرارها، يجب النظر في التوقف عن العلاج لدى المرضى الذين لا يحملون طفرات مسببة للأمراض في جينات المكمل. خطر الانتكاس بعد التوقف في هؤلاء المرضى منخفض جدًا. يجب تحديد التوقف في المرضى الذين لديهم طفرات مسببة للأمراض في جينات المكمل والذين لديهم أجسام مضادة ذاتية ضد FH مرتفعة باستمرار على أساس كل حالة على حدة، في عملية اتخاذ قرار مشتركة. يتطلب التوقف حذرًا شديدًا في المرضى الذين يعانون من مراحل مرض الكلى المزمن G3b-G5 وفي متلقي زراعة الكلى. يتطلب التوقف مراقبة دقيقة (اختبارات دم شهرية واختبارات بول أسبوعية) وإعادة بدء العلاج مبكرًا في حالة الانتكاس. في المرضى الذين يحتاجون إلى تثبيط C5 على المدى الطويل، يمكن تخصيص الأنظمة إذا تم الحفاظ على تثبيط المكمل الأمثل ( ). تعتبر فائدة قياس مستوى الدواء في الدم موضع جدل.
تثبيط C5 غير فعال في المرضى الذين لديهم طفرات DGKe أو نقص سيانوكوبالامين C في غياب طفرات المكمل. لا يوجد أيضًا دليل على أن تثبيط المكمل مفيد في الأشكال المتوسطة أو الشديدة من HUS المرتبطة بإنتاج سموم شيغا من الإشريكية القولونية (STEC)، على الرغم من أن بعض البيانات في المختبر وفي الجسم الحي توثق تنشيط المكمل في STEC-HUS. ادعت بعض تقارير الحالة تحسن HUS الشديد الناتج عن STEC بعد تثبيط C5؛ ومع ذلك، يجب ملاحظة أن STEC-HUS هو حالة ذاتية التحديد في معظم الحالات. فشلت تجربة ECULISHU (الإكوليزوماب في STEC-HUS؛ClinicalTrials.govNCT02205541)، وهي دراسة عشوائية محكومة تم فيها تخصيص 100 مريض أطفال إلى الإكوليزوماب أو الدواء الوهمي، في إظهار فائدة الإكوليزوماب في المرحلة الحادة (انظر الجدول التكميلي S1). علاوة على ذلك، تم إثارة مخاوف بشأن سمية الكبد للإكوليزوماب في STECHUS. نتائج تجربة ECUSTEC
(الإكوليزوماب في STEC؛ EudraCT 2016-000997-39) العشوائية متوقعة.
تثبيط المكمل في أشكال أخرى من HUS. لم يتم إثبات زيادة الطفرات المسببة للأمراض في المكمل في أشكال أخرى من TMA. أسفرت البيانات الاستعادية عن نتائج متناقضة بشأن الفائدة من تثبيط C5 على المدى القصير. تجارب محكومة مستقبلية قيد التقدم. بعد زراعة خلايا الدم الجذعية، يكون من الصعب تشخيص TMA نظرًا لوجود العديد من الأسباب المحتملة لانخفاض عدد الصفائح الدموية، أو إصابة الكلى الحادة، أو فقر الدم/تحلل الدم. وبالمثل، فإن التشخيص التفريقي لـ HUS الجديد بعد زراعة الكلى يكون صعبًا. في غياب سبب بديل، بما في ذلك الرفض المعتمد على الأجسام المضادة، يجب بدء العلاج باستخدام مثبط C5 وإعادة تقييمه بناءً على نتائج الجينات المكملة والاستجابة السريرية. في أشكال أخرى من TMA الثانوية، لا يوجد دليل قاطع على الفائدة من تثبيط C5.

مرض الكلى الغشائي المناعي ومرض الكلى الغشائي التكاثري C3

C3G. يظهر C3G عادةً كنمط تكاثري غشائي، على الرغم من أن الأنماط المسننة، والتكاثر داخل الشعيرات الدموية، والنمط الهلالي، والأنماط المتصلبة قد تكون موجودة مع المجهر الضوئي. مع المجهر المناعي الفلوري، يكون C3 هو السائد و Clq عادةً سلبيًا.
IC-MPGN. يتميز IC-MPGN بترسب معقدات مناعية تحتوي على كل من الأجسام المضادة متعددة النسائل والمكمل. هذه الإصابة تنجم تقليديًا عن وجود مستضد مزمن مع أو بدون معقدات مناعية دائرية وعادة ما تكون بسبب العدوى أو المناعة الذاتية. يمكن أن يكون IC-MPGN مطابقًا لـ C3G مع المجهر الضوئي؛ ومع ذلك، في المجهر المناعي الفلوري، يكون تلوين C3 موجودًا مع IgG و , و IgM بشدات متفاوتة. يمكن أن يكون تحديد المستضد المحرك تحديًا ويتطلب تاريخًا سريريًا شاملاً مع مراجعة التعرضات السابقة والأمراض المصاحبة (بشكل رئيسي العدوى). في البالغين، تكون العدوى، والأمراض المناعية الذاتية، والأجسام المضادة أحادية النسيلة مسؤولة عن معظم حالات IC-MPGN.
حقيقة أن MPGN المرتبطة بالأجسام المضادة الأولية نادرة في البالغين. إنها أكثر شيوعًا في الأطفال وغالبًا ما تكون مرتبطة بأدلة جينية و/أو مصلية على عدم تنظيم المسار البديل. يمكن أن يتطور IC-MPGN إلى C3G، وفي مثل هذه الحالات، تكون العدوى هي المحفز الأكثر شيوعًا للمرض.

الاختبارات الجينية

جينات C3G و IC-MPGN معقدة، وفي رأي معظم المشاركين، يجب تقييمها في جميع المرضى الذين لديهم C3G سلبية للبارا بروتين و ICMPGN الأولية. تشير الدراسات إلى أن الطفرات النادرة (تكرار الأليل الصغير ), الأكثر شيوعًا في , أو ، ستوجد في حوالي من المرضى، غالبًا مع نقص بروتين مكمل كمي مطابق
. ترتبط وجود طفرة نادرة بضعف بقاء الكلى.
C3G العائلية نادرة وقد ارتبطت بـ (i) إعادة ترتيب جينومي وراثي سائد يؤدي إلى توليد جينات اندماج مرتبطة بـ CFH (CFHR) مع تكرار مجالات التثني المبدئية مثل اعتلال الكلى CFHR5 الكلاسيكي (المتوطنة في قبرص؛ CFHR5/5)، على الرغم من أن أمثلة أخرى تشمل , CFHR5/2، واندماجات CFHR1 ; (ii) طفرات C3 السائدة الموروثة في عائلات فردية مثل c.2768_2773delACGGTG، p.(Asp923_Gly924del)؛ c. , p.(Ile756Thr)؛ و c.2390A>T، p.(Asp797Val)، التي تقع في منطقة ساخنة للطفرات ; و (iii) وراثة متنحية ثنائية الأليل الطفرات، التي تم وصفها مع مرض الترسبات الكثيفة والتهاب كبيبات الكلى C3G الذي يظهر في وقت مبكر من الحياة. استشارة وراثية لهذه العائلات معقدة ودقيقة، ويجب أن تتضمن تحليل الفصل الجيني اختبارات شاملة للعلامات البيولوجية الجينية والمكملة. لا يمكن تحديد خطر الإصابة بالمرض من خلال متابعة فصل الأليل فقط كما هو موضح من خلال المتغيرات المفردة المسببة للتوقف/التغيرات غير المعنوية في جينات مثل ، و حيث يعتمد النمط الظاهري الملحوظ على خلفية تكامل الجينات الأساسية ومستويات بروتينات التكامل المتداولة. تعني هذه التعقيدات أن النفاذية متغيرة بشكل كبير، ولكن أيضًا أن النمط الظاهري الملحوظ يمكن أن يكون C3G/IC-MPGN، أو aHUS، أو مرض آخر ذي صلة، مما يعقد بشكل كبير تفسير المتغيرات ودراسات ارتباط النمط الجيني بالنمط الظاهري.
تحديد عوامل الخطر الجينية غير الأحادية الجين لمرض C3G و IC-MPGN. تؤثر المتغيرات الشائعة في HLA (مستضد الكريات البيضاء البشرية) و C3 و CFH و CD46 (MCP) على خطر الإصابة بمرض C3G و ICMPGN ولكن لها تأثيرات متواضعة فقط (نسبة الأرجحية: ). هذا التأثير ليس قابلاً للتنفيذ سريرياً إذا لم يحمل الفرد أي متغيرات جينية أخرى؛ ومع ذلك، إذا كان هناك متغير مسبب للمرض، فإن المتغيرات الشائعة التي تعدل المخاطر قد تؤثر على النفاذية وتساعد في إرشاد الاستشارات الجينية في هذه العائلات. يوصى بالتعاون الدولي لدراسة وراثيات C3G، مع ضوابط لتحديد المتغيرات والأصل، مكملة بتوصيف وظيفي قوي للمتغيرات المحددة.

اختبار السيرولوجيا

العوامل الكلوية (NeFs) موجودة في من المرضى وتشكل مجموعة غير متجانسة من الأجسام المضادة الذاتية التي تثبت إما أو كليهما معقدات C3 convertase وC5 convertase. وهي متميزة عن الأجسام المضادة الذاتية المضادة لـ FB وC3 من حيث أن NeFs ترتبط بالتحويلات ولكن ليس بالبروتينات الأصلية التي تُشتق منها التحويلات. أكثر الاختبارات تحديدًا وحساسية تقيس نشاط NeF من خلال التحلل الدموي المدفوع بالمكملات لكريات الدم الحمراء للأغنام (الجدول التكميلي S6).
عادة ما يرتبط وجود NeFs بانخفاض في C3 المتداول وزيادة في منتجات تنشيط المكملات. مرتفع ترابط النشاط
مع مستويات منخفضة من C 3 (C 3 NeF و C 5 NeF) ومستويات عالية من sC5b-9 (C 5 NeF). C 3 NeF أكثر شيوعًا في مرض الترسبات الكثيفة، وC 5 NeF أكثر شيوعًا في التهاب كبيبات الكلى من النوع C 3 وIC-MPGN. تشير اكتشافات NeFs إلى عملية مناعية ذاتية، ويمكن أن تحدد موقع اختلال تنظيم المكمل، وقد تقترح استجابة للعلاجات التي تثبط سلسلة المكمل على مستويات مختلفة. يتم التعرف أحيانًا على C4NeFs في C3G وIC-MPGN، ولها تأثير مشابه لـ ويُعتقد أنها تنشط المحولات في المسارات الكلاسيكية والليكتين (C4b2a وC4b2aC3b).
يجب أن يرافق فحص NeF تحليل علامات البيولوجية التكميلية لتحديد درجة اختلال التنظيم المرافق للمكمل (الجدول التكميلي S6). دور تحليل التجمع في كشف تأثير C 3 NeFs و C5NeFs على التشخيص وتوضيح مسببات المرض واعد ولكنه يحتاج إلى التحقق. اختبار الأجسام المضادة الذاتية المضادة لـ FB مفيد، حيث تم ربط ارتفاع عناوين هذه الأجسام المضادة المؤقتة بالتهاب كبيبات الكلى بعد العدوى.
لا توجد اختبارات تجارية لمؤشرات NeF متاحة، ويتم إجراء الاختبارات في مختبرات متخصصة. تعمل العديد من هذه المختبرات بنشاط مع لجنة الاتحاد الدولي لجمعيات المناعة من أجل توحيد وتقييم جودة قياسات المكملات للتحقق المتبادل من اختبارات المكملات وضمان الدقة وإمكانية التكرار في نتائج الاختبارات. يجب التحقق من صحة بروتوكولات مختبرات المرجع الشائعة ونشرها لاختبار الأجسام المضادة الذاتية لـ FH و NeFs ومكونات المكمل الفردية ومنتجات تحللها. إن ارتباط قياسات المكملات بالنتائج السريرية مهم للسماح بتقييم فعالية الأدوية في المستقبل.

الأجسام المضادة الأحادية النسيلة

يجب فحص جميع البالغين الذين تزيد أعمارهم عن 50 عامًا والذين يعانون من C3G/IC-MPGN للكشف عن الغاموباثي الأحادية. فرصة أن يكون وجود شريط وحيد النسيلة عرضيًا بالنسبة لـ C 3 G صغيرة في هؤلاء سنوات من العمر (في الخبرة السريرية، كانت أصغر حالة من اعتلال الغلوبولين المناعي الأحادي – C3G هي حالة عمرها 17 عامًا). لتحسين نتائج الكلى، عند تحديد بروتين مفرط، يجب توجيه العلاج نحو المرض الهيماتولوجي الأساسي. قصصياً، أظهر استخدام دورة قصيرة من الإكوليزوماب بالتزامن مع العلاج الهيماتولوجي نتائج إيجابية لدى المرضى الذين يعانون من مرض الكلى C3G المدفوع بالجمّاعة الأحادية. ستكون بيانات التجارب ضرورية لتقييم ما إذا كان تثبيط المكملات مع أو بدون العلاج الموجه نحو النسيلة أفضل من علاج المرض الهيماتولوجي بمفرده.

العلاج

التاريخ الطبيعي لـ C3G و IC-MPGN غير مفهوم بشكل كامل، مما يجعل من الصعب تحديد القيمة التنبؤية للمعايير المبكرة للمرض. ومع ذلك، هناك أدلة على أن ميزات الخزعة، والبروتين في البول، ووظيفة الكلى هي علامات تنبؤية مهمة. بالإضافة إلى ذلك، قد تكون مؤشرات المكملات الدائرية في البلازما ذات قيمة تنبؤية.
الأهمية لأن معظم الحالات تظهر تنشيط المكمل في المرحلة السائلة.
في C3G، تشير تكرارية وتأثير NeFs الوظيفي بالإضافة إلى وجود متغيرات في جينات المكمل المرتبطة بترسب C3 في الكبيبة بقوة إلى أن تنشيط المسار البديل للمكمل يلعب دورًا مركزيًا ومبكرًا في علم الأمراض للمرض. بالنسبة لـ C3G المدفوع بـ (C3NeF) المناعي الذاتي، لم تثبت العلاجات المستهدفة للأجسام المضادة الذاتية فعاليتها، مما يشير إلى أن كميات صغيرة من NeF قد تكون كافية لدفع المرض وأن الإزالة الكاملة غير قابلة للتحقيق مع الاستراتيجيات المثبطة للمناعة المتاحة حاليًا. تعتبر العلاجات المستهدفة للمسار البديل نهجًا جذابًا في هذا المرض وقد تلبي حاجة طبية كبيرة غير ملباة.
العلاجات الداعمة المحددة مفيدة. في الحالات الخفيفة (مثل، البروتين في البول) دون ميل للزيادة في البالغين، في الأطفال، يجب نصح العلاجات العامة لحماية الكلى (حجب نظام الرينين-أنجيوتنسين-الألدوستيرون كإجراء أولي مضاد للبروتينوريا ومضاد لارتفاع ضغط الدم) واتباع نظام غذائي منخفض الصوديوم. في دراسة رصدية استعادية، كان استخدام حاصرات نظام الرينين-أنجيوتنسين-الألدوستيرون مرتبطًا بتحسن في بقاء الكلى. لقد تم الإبلاغ عن أن الرينين قادر على قطع لكن هذا الادعاء قد تم دحضه ولا ينبغي أن يؤثر على العلاج. تفتقر الأدلة لاستخدام مثبطات ناقل الصوديوم والجلوكوز 2، لكن البيانات من أمراض الكبيبات الأخرى تشير إلى فائدة محتملة، خاصة لدى البالغين المصابين بمرض الكلى المزمن C3G/IC-MPGN.
للمرضى الذين يعانون من البروتين في البول الأطفال على الرغم من تلقي العلاج الداعم المحسن، يُعتبر العلاج بمثيل الميكوفينولات أو نظائر حمض الميكوفينوليك (بالإضافة إلى الكورتيكوستيرويدات) معقولاً، خاصة مع زيادة الألبومين في البول بمرور الوقت ووجود آفات نشاط شديدة في خزعة الكلى. على الرغم من أن آلية العمل غير معروفة، من المحتمل أن يقلل الميكوفينولات موفيتيل من التهاب الكبيبات بدلاً من تثبيط نشاط C3NeF. مع زيادة البروتينوريا الأساسية، تنخفض احتمالية حدوث تأثير مع الميكوفينولات موفيتيل. الانتكاسة بعد التوقف عن العلاج شائعة، على الرغم من أنها أقل احتمالاً مع العلاجات الأطول. في الدراسات الرصدية الاستعادية، أظهر الميكوفينولات موفيتيل قدرة أكبر على تحفيز الشفاء مقارنةً بأنظمة المناعة المثبطة الأخرى، على الرغم من الإبلاغ عن اختلافات ملحوظة بين السلاسل. كما تم الإبلاغ عن بعض الفوائد من استخدام مثبطات الكالسينيورين. حالياً، تعتبر العوامل المثبطة للمناعة عن طريق الفم هي الأساس في علاج أشكال C3G و IC-MPGN الأكثر شدة نظراً لعدم وجود بدائل مثبتة.
مثبطات التكامل الطرفي / علاج البلازما. تشير تقارير الحالات والسلاسل الحالة إلى أن المرض المتقدم بسرعة على شكل هلال أو وجود آفات TMA (أحيانًا ولكن ليس دائمًا مع مستويات مرتفعة من sC5b-9 في الدورة الدموية) من المرجح أن تستجيب للإكوليزوماب. تم الإبلاغ عن تحسين سريع وكبير ومستدام.
مع الإيكوليزوماب في بعض المرضى الذين يعانون من هذه العروض الشديدة؛ ومع ذلك، فإن الوصول إلى الإيكوليزوماب محدود جدًا في معظم البلدان. بالإضافة إلى ذلك، فإن ندرة وسرعة فقدان وظيفة الكلى في هؤلاء المرضى تعني أنهم ممثلون بشكل ضعيف في التجارب السريرية، لذا فإن بيانات سلسلة الحالات من غير المرجح أن تكون متاحة قريبًا. يبدو أن فعالية الإيكوليزوماب في الأشكال التقدمية البطيئة من C3G محدودة. تم إثبات الفوائد قصيرة المدى لحقن البلازما أو تبادل البلازما للحالات المقاومة مع نقص FH، لكن الأدلة على الفائدة طويلة المدى مفقودة. يمكن أن يكون العلاج القائم على البلازما مرهقًا للغاية، وهناك خطر من التحسس.
قد يقدم تثبيط مسار البديل للمكملات فائدة للمرضى الذين تشير الميزات السريرية أو الكيميائية الحيوية أو النسيجية إلى خطر مرتفع من النتائج السيئة، مثل أولئك الذين لديهم درجة نشاط عالية، ومؤشر مزمن منخفض، وبروتينوريا، ومتلازمة كلوية، أو انخفاض في eGFR. تشير نتائج المرحلة 2 ونتائج المرحلة 3 الأولية مع الأفاكوبان (مضاد C5aR)، الإيبتاكوبان (مثبط FB)، والبيغسيتاكوبلان (مثبط C3) إلى تقليل مهم في البروتينوريا على المدى القصير واستقرار وظيفة الكلى (الجدول التكميلي S1). تفتقر البيانات الآلية حول تأثير هذه العلاجات في حالات المرض. سيكون من المفيد جعل بيانات العلامات الحيوية للتجارب علنية لتخصيص تصميمات التجارب.
الأدلة التي تدعم تثبيط المكملات أكثر محدودية في IC-MPGN. بعض حالات IC-MPGN تتصرف بشكل مشابه لـ C3G، وبعض المرضى ينتقلون من IC-MPGN إلى C3G. يتماشى هذا مع الملاحظة، حيث يوجد تداخل في عوامل خطر الطفرات الجينية الشائعة وبعض العلامات المصلية. إذا تم استبعاد الأمراض المعدية أو المناعية الذاتية أو الأحادية النسيلة، فمن المعقول علاج IC-MPGN بشكل مشابه لـ C3G. ومع ذلك، فإن البيانات حول مرضى IC-MPGN الذين تم علاجهم بمثبطات المكملات نادرة (تجربة EAGLE [الإيكوليزوماب في MPGN الأولي] شملت مرضى IC-MPGN)، على الرغم من أن التجارب الأخيرة ستوفر نتائج قريبًا (انظر الجدول 1). لتحليل آثار العلاجات المختلفة بأثر رجعي، هناك حاجة إلى مجموعات كبيرة مع معايير تشخيصية محددة جيدًا، بالإضافة إلى تضمين حالات ICMPGN في دراسات مستقبلية مع مثبطات مكمل جديدة.
نقاط النهاية. النقاط المقترحة لتقييم فعالية العلاج هي انخفاض في البروتينوريا واستقرار أو تحسين في eGFR. تحتاج بيانات التاريخ الطبيعي طويلة المدى لتحديد كيفية تعريف السيطرة الناجحة على البروتينوريا. نظرًا لصغر سن بدء المرض، قد يحتاج بعض المرضى إلى وظيفة كلوية لأكثر من 80 عامًا من بدء المرض. تعتبر علم الأنسجة، eGFR، ميل eGFR، فشل الكلى، الوذمة، متلازمة كلوية، وشفاء الدم في البول عوامل يجب أخذها في الاعتبار. قد تكون علامات المكمل (مستويات C3، نشاط C3NeF، وعلامات تنشيط المسار البديل) مفيدة في مراقبة فعالية تثبيط المكمل، ولكن هناك حاجة إلى بيانات أفضل لربط النشاط النظامي للمكملات مع النتائج السريرية. أعرب المرضى الحاضرون عن رأيهم بأن تكرار
الخزعات ليس بالضرورة غير مقبول للمشاركة في التجارب.
باستثناء البيانات التي تشير إلى فائدة حجب المسار النهائي في حالات مختارة، لا توجد حاليًا بيانات كافية لتخصيص اختيار مثبط مكمل محدد بناءً على العمل المخبري المصلية والجينية وعلامات المرضى الذين يعانون من C3G و IC-MPGN.

الاستنتاجات والاتجاهات المستقبلية

تظهر العديد من خطوط الأدلة أن تنشيط أو اختلال تنظيم المكمل يلعب دورًا ما في مسببات مجموعة متزايدة من أمراض الكلى. على الرغم من أن اختلال تنظيم المسار البديل في aHUS و C3G/ IC-MPGN يبدو أنه المحرك الرئيسي للمرض، في حالات أخرى، قد يلعب المكمل دورًا أكثر دقة، على سبيل المثال، perpetuating إصابة الكبيبات بعد ترسب المعقد المناعي، كما في MN، أو المساهمة في الضرر المزمن، كما في مرض الكلى السكري أو FSGS. مع توفر عدد متزايد من العوامل العلاجية التي تستهدف أجزاء مختلفة من سلسلة المكملات، يتطلب فهم كيفية ومتى استخدامها تحسينًا كبيرًا في قدرتنا على تحديد المسار أو البروتين المعني في كل مريض وتوصيف دوره (مركزي أو هامشي) ومرحلة (حاد أو مزمن). يسلط الجدول 2 الضوء على المخاوف والاحتياجات لدى السكان المرضى التي يجب تكريمها ومعالجتها. يلخص الجدول التكميلي S2 توافق المجموعة حول مكاننا بالنسبة لجميع أمراض الكلى الموصوفة بناءً على الأبحاث المتاحة حاليًا، بينما يحدد الجدول 3 أولويات البحث التي من المحتمل أن تحسن فهمنا لاختلال تنظيم المكمل في أمراض الكلى وتحسين رعاية المرضى. من الضروري أن تكون هناك دراسات علامات حيوية لتحديد لوحات علامات حيوية محددة للمرض يمكن أن تسهل التشخيص، ومراقبة العلاج، و/أو تقييم أمراض الكبيبات المختلفة.
نظرًا لأن هذه الأمراض الكلوية نادرة ومتنوعة في الغالب، يمكن تحقيق تقدم كبير فقط من خلال جهود منسقة ومتعددة الجنسيات لتحديد علامات تنشيط/اختلال تنظيم المكمل، وتوحيد قياسها، وتعزيز تنفيذها العالمي. تحتاج التجارب السريرية التي تهدف إلى تقييم مثبطات المكملات في أمراض الكلى إلى جمع بيانات مصلية، دم كامل، بول، وأنسجة خزعة كلوية بشكل استباقي للتحقق من الأدوات التشخيصية والتنبؤية الحالية والمستقبلية. يجب أن يكون نشر البيانات حول علامات المكمل في الأنسجة والبلازما والبول مطلوبًا في هذه الدراسات. البيانات المحدودة المتاحة بالفعل عن العلامات الحيوية مدرجة في الجدول التكميلي S3. يحتاج جميع أصحاب المصلحة المعنيين (جمعيات المرضى ومقدمي الرعاية، الجمعيات الطبية، السلطات الصحية الوطنية والدولية، والشركات الدوائية) إلى التآزر لتعزيز السجلات، البنوك الحيوية، تبادل البيانات، والوصول المفتوح إلى نتائج التجارب للسماح لفهمنا ومواردنا بالتطور إلى النقطة التي يمكننا فيها بصمة المرضى الأفراد وتقديم تشخيص مبكر ودقيق وعلاج آمن وفعال وميسور التكلفة.

الملحق

المشاركون الإضافيون في المؤتمر

فيديريكو ألبيري، إيطاليا؛ لوكا أنتونوتشي، إيطاليا؛ تاديج أفشين، سلوفينيا؛ أرفيند باجا، الهند؛ إنغيبورغ م. بايما، هولندا؛ ميكيل بلاسكو، إسبانيا؛ صوفي شوفية، فرنسا؛ إتش. تيرينس كوك، المملكة المتحدة؛ باولو كرافيدي، الولايات المتحدة؛ ماري-أجنيس دراجون-دوري، فرنسا؛ لورين فيشر، الولايات المتحدة؛ أغنيس ب. فوكو، الولايات المتحدة؛ أشلي فريزر-أبل، الولايات المتحدة؛ فيرونيك فريمو-باكي، فرنسا؛ نينا غورليتش، ألمانيا؛ مارك هاوس، الولايات المتحدة؛ أليستر همفريز، المملكة المتحدة؛ فيفيكاناند جها، الهند؛ أرين جاوهال، كندا؛ ديفيد كافانا، المملكة المتحدة؛ أندرياس كرونبيكلر، المملكة المتحدة؛ ريتشارد أ. لافاييت، الولايات المتحدة؛ لين د. لانيغ، الولايات المتحدة؛ ماثيو ليمير، كندا؛ موغلي لو كوانتريك، فرنسا؛ كريستوف ليشت، كندا؛ أدريان ليو، سنغافورة؛ ستيفن ب. مكادو، المملكة المتحدة؛ نيكولاس ر. ميدجرال-توماس، المملكة المتحدة؛ بيير لويجي ميروني، إيطاليا؛ يوهان موريلي، بلجيكا؛ كارلا م. نيستر، الولايات المتحدة؛ مانويل براغا، إسبانيا؛ راجا راماشاندران، الهند؛ هيذر ن. رايش، كندا؛ جوزيبي ريموزي، إيطاليا؛ سانتياغو رودريغيز دي قرطبة، إسبانيا؛ غاري روبنسون، المملكة المتحدة؛ بيير رونكو، فرنسا؛ بيتر روسينغ، الدنمارك؛ ديفيد ج. سالانت، الولايات المتحدة؛ سانجيف سيثي، الولايات المتحدة؛ ماريان سيلكجار نيلسن، الدنمارك؛ وين-تشاو سونغ، الولايات المتحدة؛ فابريزيو سبولتي، إيطاليا؛ رونالد ب. تايلور، الولايات المتحدة؛ نيكول ك. أ. ج. فان دي كار، هولندا؛ سيس فان كوتن، هولندا؛ لين وودوارد، المملكة المتحدة؛ يوزهو زانغ، الولايات المتحدة؛ بيتر ف. زيبفل، ألمانيا؛ وماركو زوكاتو، الإمارات العربية المتحدة

الإفصاحات

قدمت KDIGO دعمًا للسفر والكتابة الطبية لجميع المشاركين في المؤتمر. يكشف MV عن مشاركته في التجارب السريرية المدعومة وتلقيه لرسوم استشارية من Alexion وApellis وBayer وBioCryst وChemoCentryx وChinook Therapeutics وNovartis وPurespring Therapeutics وRoche وTravere Therapeutics. يكشف JB عن تلقيه تمويلًا بحثيًا من Alexion وArgenx وNovartis وOmeros؛ ورسوم استشارية من Alexion وAlnylam Pharmaceuticals وArgenx وBioCryst وKira Pharmaceuticals وNovartis وOmeros وQ32 Bio وRoche. يكشف LHB عن تلقيه رسوم استشارية من CANbridge Pharmaceuticals وCerium Pharmaceuticals وNovartis وTravere Therapeutics. يتم دعم LHB جزئيًا من قبل المعهد الوطني للسكري وأمراض الجهاز الهضمي وأمراض الكلى (NIDDK) R01 DK 126978. يكشف FF عن تلقيه رسوم استشارية مدفوعة لمؤسسته من Alexion وApellis وNovartis وRoche وSobi، ومشاركته في اللجان الاستشارية لـ Alexion وApellis وNovartis وRoche وSobi. يكشف DPG عن تلقيه رسوم استشارية من Alexion وAlnylam وNovartis ويعمل كرئيس للجنة الأمراض النادرة في جمعية الكلى البريطانية. يكشف EGdJ عن تلقيه منح أو عقود من الاتحاد الأوروبي وMinisterio de Ciencia e Innovación؛ ورسوم استشارية مدفوعة لمؤسستها من Q32 Bio؛ وأتعاب المتحدثين من Alexion وSobi؛ وعمله كأمين لشبكة التكامل الأوروبية وعضو في مجلس إدارة شبكة التكامل الأوروبية. يكشف MN عن تلقيه منح أو رسوم استشارية من Alexion وBioCryst وChemoCentryx وGemini وNovartis وSobi. تم دعم MN من قبل Fondazione Regionale per la Ricerca Biomedica (Regione Lombardia)، المشروع ERAPERMED2020-151، GA 779282. يكشف MCP عن تلقيه منح مؤسسية من زمالة Wellcome Senior وOmeros؛ ورسوم استشارية من Alexion وAnnexon Biosciences وCatalyst Biosciences وComplement Therapeutics وGemini Therapeutics وGyroscope Therapeutics وPurespring Therapeutics وSobi؛ ومدفوعات لشهادة الخبراء من Osborne Clarke؛ ومدفوعات لعمله كعضو في لجنة مراجعة المنح لـ Barts Charity. MCP هو زميل كبير في Wellcome في العلوم السريرية (212252/Z/18/Z). يعترف بالدعم من المعهد الوطني للبحوث الصحية (NIHR) مركز البحوث البيولوجية القائم في Imperial College Healthcare National Health Service Trust وImperial College London ومن شبكة البحوث السريرية NIHR. الآراء المعبر عنها هي آراء المؤلف وليست بالضرورة آراء خدمة الصحة الوطنية أو NIHR أو وزارة الصحة.
يكشف KS عن تلقيه أتعاب المتحدثين من GSK وNovo Nordisk وPfizer، ومنح مؤسسية من AstraZeneca وBoehringer Ingelheim وGenentech وGilead Sciences وGSK وKKC Corporation وNovartis وRegeneron Pharmaceuticals. يكشف JMT عن تلقيه منح من وزارة الدفاع الأمريكية للمعاهد الوطنية للصحة؛ ورسوم استشارية من وامتلاكه أسهم في Q32 Bio وإمكانية تلقيه دخل من حقوق الملكية منها؛ وأتعاب المتحدثين من مؤسسة الكلى الوطنية الأمريكية؛ ومشاركته في اللجان الاستشارية لـ BioMarin وRocket Pharmaceuticals. يكشف MJ عن المدفوعات التالية لمؤسسته: منح من AstraZeneca؛ ورسوم استشارية من Astellas وAstraZeneca وBayer وBoehringer Ingelheim وCardioRenal وCSL Vifor وGSK وSTADA Eurogenerics وVertex Pharmaceuticals؛ وأتعاب المتحدثين من AstraZeneca وBayer وBoehringer Ingelheim؛ ومدفوعات لشهادة الخبراء من Astellas وSTADA Eurogenerics؛ وتلقيه دعمًا للسفر من AstraZeneca وBoehringer Ingelheim. يكشف MJ أيضًا عن عمله كرئيس مشارك تطوعي لـ KDIGO. يكشف WCW عن تلقيه منح أو عقود من المعاهد الوطنية للصحة؛ ورسوم استشارية من Akebia وArdelyx وAstraZeneca وBayer وBoehringer Ingelheim وGSK وMerck Sharp & Dohme وNatera وPharmacosmos وReata Pharmaceuticals وUnicycive وVera Therapeutics وZydus Lifesciences؛ وأتعاب المتحدثين من GSK وPharmacosmos؛ ودعم السفر من KDIGO؛ ومشاركته في مراقبة سلامة البيانات أو اللجان الاستشارية لـ Akebia/Otsuka وAstraZeneca وBayer وBoehringer Ingelheim/Lilly وGSK وMerck Sharp & Dohme وNatera وPharmacosmos وReata Pharmaceuticals وVera Therapeutics وZydus Lifesciences؛ وعمله كرئيس مشارك لـ KDIGO. يكشف RJHS عن توجيهه لمختبرات الأبحاث الجزيئية للأنف والأذن والحنجرة والكلى. جميع المؤلفين الآخرين أعلنوا عدم وجود مصالح متنافسة.

الشكر والتقدير

كان المؤتمر برعاية مرض الكلى: تحسين النتائج العالمية (KDIGO) وتم دعمه جزئيًا من خلال منح تعليمية غير مقيدة من Alexion وAlnylam Pharmaceuticals وApellis وBioCryst وCalliditas Therapeutics وChemoCentryx وChinook Therapeutics وCSL Vifor وNovartis وOmeros وOtsuka وRoche وSanofi وVisterra.
يشكر المؤلفون ديبي ميزيلز على مساعدتها في الرسوم التوضيحية.
المواد التكميلية متاحة عبر الإنترنت على www.kidneyinternational.org.

REFERENCES

  1. Goodship TH, Cook HT, Fakhouri F, et al. Atypical hemolytic uremic syndrome and C3 glomerulopathy: conclusions from a “Kidney Disease: Improving Global Outcomes” (KDIGO) Controversies Conference. Kidney Int. 2017;91:539-551.
  2. Thurman JM. Complement and the kidney: an overview. Adv Chronic Kidney Dis. 2020;27:86-94.
  3. Zipfel PF, Wiech T, Rudnick R, et al. Complement inhibitors in clinical trials for glomerular diseases. Front Immunol. 2019;10:2166.
  4. Dixon BP, Greenbaum LA, Huang L, et al. Clinical safety and efficacy of pegcetacoplan in a Phase 2 study of patients with C3 glomerulopathy and other complement-mediated glomerular diseases. Kidney Int Rep. 2023;8:2284-2293.
  5. Barratt J, Liew A, Yeo SC, et al. Phase 2 trial of cemdisiran in adult patients with IgA nephropathy: a randomized controlled trial. Clin J Am Soc Nephrol. 2024;19:452-462.
  6. Garnier A, Brochard K, Kwon T, et al. Efficacy and safety of eculizumab in pediatric patients affected by Shiga toxin-related hemolytic and uremic syndrome: a randomized, placebo-controlled trial. J Am Soc Nephrol. 2023;34:1561-1573.
  7. Bruchfeld A, Magin H, Nachman P, et al. C5a receptor inhibitor avacopan in immunoglobulin A nephropathy-an open-label pilot study. Clin Kidney J. 2022;15:922-928.
  8. Jayne DRW, Merkel PA, Schall TJ, et al. Avacopan for the treatment of ANCA-associated vasculitis. N Engl J Med. 2021;384:599-609.
    8a. Barbour S, Makris A, Hladunewich MA, et al. An exploratory trial of an investigational RNA therapeutic, IONIS FB-LRx, for treatment of IgA nephropathy: new interim results [ASN Kidney Week 2023 abstract]. J Am Soc Nephrol. 2023;34:988.
  9. Wong E, Nester C, Cavero T, et al. Efficacy and safety of iptacopan in patients with C3 glomerulopathy. Kidney Int Rep. 2023;8:2754-2764.
  10. Zhang H, Rizk DV, Perkovic V, et al. Results of a randomized doubleblind placebo-controlled Phase 2 study propose iptacopan as an alternative complement pathway inhibitor for IgA nephropathy. Kidney Int. 2024;105:189-199.
  11. Nester C, Appel GB, Bomback AS, et al. Clinical outcomes of patients with C3G or IC-MPGN treated with the Factor D inhibitor danicopan: final results from two Phase 2 studies. Am J Nephrol. 2022;53:687700.
  12. Podos SD, Trachtman H, Appel GB, et al. Baseline clinical characteristics and complement biomarkers of patients with C 3 glomerulopathy enrolled in two Phase 2 studies investigating the Factor D inhibitor danicopan. Am J Nephrol. 2022;53:675-686.
  13. Zhang Y, Martin B, Spies MA, et al. Renin and renin blockade have no role in complement activity. Kidney Int. 2024;105:328-337.
  14. Dick J, Gan PY, Ford SL, et al. C5a receptor 1 promotes autoimmunity, neutrophil dysfunction and injury in experimental antimyeloperoxidase glomerulonephritis. Kidney Int. 2018;93:615-625.
  15. Xiao H, Dairaghi DJ, Powers JP, et al. C5a receptor (CD88) blockade protects against MPO-ANCA GN. J Am Soc Nephrol. 2014;25:225231.
  16. Thomas MC, Brownlee M, Susztak K, et al. Diabetic kidney disease. Nat Rev Dis Primers. 2015;1:15018.
  17. Reidy K, Kang HM, Hostetter T, et al. Molecular mechanisms of diabetic kidney disease. J Clin Invest. 2014;124:2333-2340.
  18. Lu Q, Hou Q, Cao K, et al. Complement factor B in high glucose-induced podocyte injury and diabetic kidney disease. JCI Insight. 2021;6: e147716.
  19. Li L, Wei T, Liu S, et al. Complement C5 activation promotes type 2 diabetic kidney disease via activating STAT3 pathway and disrupting the gut-kidney axis. J Cell Mol Med. 2021;25:960-974.
  20. Tan SM, Ziemann M, Thallas-Bonke V, et al. Complement C5a induces renal injury in diabetic kidney disease by disrupting mitochondrial metabolic agility. Diabetes. 2020;69:83-98.
  21. Morigi M, Perico L, Corna D, et al. C3a receptor blockade protects podocytes from injury in diabetic nephropathy. JCI Insight. 2020;5: e131849.
  22. Hansen TK, Tarnow L, Thiel S, et al. Association between mannosebinding lectin and vascular complications in type 1 diabetes. Diabetes. 2004;53:1570-1576.
  23. Saraheimo M, Forsblom C, Hansen TK, et al. Increased levels of mannanbinding lectin in type 1 diabetic patients with incipient and overt nephropathy. Diabetologia. 2005;48:198-202.
  24. Sheng X, Qiu C, Liu H, et al. Systematic integrated analysis of genetic and epigenetic variation in diabetic kidney disease. Proc Natl Acad Sci U S A. 2020;117:29013-29024.
  25. Acosta J, Hettinga J, Flückiger R, et al. Molecular basis for a link between complement and the vascular complications of diabetes. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000;97:5450-5455.
  26. Woroniecka KI, Park AS, Mohtat D, et al. Transcriptome analysis of human diabetic kidney disease. Diabetes. 2011;60:2354-2369.
  27. Angeletti A, Cantarelli C, Petrosyan A, et al. Loss of decay-accelerating factor triggers podocyte injury and glomerulosclerosis. J Exp Med. 2020;217:e20191699.
  28. Han R, Hu S, Qin W, et al. C3a and suPAR drive versican V1 expression in tubular cells of focal segmental glomerulosclerosis. JCI Insight. 2019;4: e122912.
  29. van de Lest NA, Zandbergen M, Wolterbeek R, et al. Glomerular C4d deposition can precede the development of focal segmental glomerulosclerosis. Kidney Int. 2019;96:738-749.
  30. Thurman JM, Wong M, Renner B, et al. Complement activation in patients with focal segmental glomerulosclerosis. PLoS One. 2015;10: e0136558.
  31. Trachtman H, Laskowski J, Lee C, et al. Natural antibody and complement activation characterize patients with idiopathic nephrotic syndrome. Am J Physiol Renal Physiol. 2021;321:F505-F516.
  32. Jiang S, Di D, Jiao Y, et al. Complement deposition predicts worsening kidney function and underlines the clinical significance of the 2010 Renal Pathology Society Classification of Diabetic Nephropathy. Front Immunol. 2022;13:868127.
  33. Ajjan RA, Schroeder V. Role of complement in diabetes. Mol Immunol. 2019;114:270-277.
  34. Rauterberg EW, Lieberknecht HM, Wingen AM, et al. Complement membrane attack (MAC) in idiopathic IgA-glomerulonephritis. Kidney Int. 1987;31:820-829.
  35. Janssen U, Bahlmann F, Kohl J, et al. Activation of the acute phase response and complement C 3 in patients with IgA nephropathy. Am J Kidney Dis. 2000;35:21-28.
  36. Nakagawa H, Suzuki S, Haneda M, et al. Significance of glomerular deposition of C3c and C3d in IgA nephropathy. Am J Nephrol. 2000;20: 122-128.
  37. Garcia-Fuentes M, Martin A, Chantler C, et al. Serum complement components in Henoch-Schonlein purpura. Arch Dis Child. 1978;53:417419.
  38. Dumont C, Merouani A, Ducruet T, et al. Clinical relevance of membrane attack complex deposition in children with IgA nephropathy and Henoch-Schonlein purpura. Pediatr Nephrol. 2020;35:843-850.
  39. Touchard G, Maire P, Beauchant M, et al. Vascular IgA and C3 deposition in gastrointestinal tract of patients with Henoch-Schoenlein purpura. Lancet. 1983;1:771-772.
  40. Morichau-Beauchant , Touchard , Maire , et al. Jejunal IgA and C3 deposition in adult Henoch-Schonlein purpura with severe intestinal manifestations. Gastroenterology. 1982;82:1438-1442.
  41. Roos A, Bouwman LH, van Gijlswijk-Janssen DJ, et al. Human IgA activates the complement system via the mannan-binding lectin pathway. J Immunol. 2001;167:2861-2868.
  42. Roos A, Rastaldi MP, Calvaresi N, et al. Glomerular activation of the lectin pathway of complement in IgA nephropathy is associated with more severe renal disease. J Am Soc Nephrol. 2006;17:1724-1734.
  43. Segarra A, Romero K, Agraz I, et al. Mesangial C4d deposits in early IgA nephropathy. Clin J Am Soc Nephrol. 2018;13:258-264.
  44. Guo WY, Zhu L, Meng SJ, et al. Mannose-binding lectin levels could predict prognosis in IgA nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2017;28:31753181.
  45. Hisano S, Matsushita M, Fujita T, et al. Activation of the lectin complement pathway in Henoch-Schonlein purpura nephritis. Am J Kidney Dis. 2005;45:295-302.
  46. Damman J, Mooyaart AL, Bosch T, et al. Lectin and alternative complement pathway activation in cutaneous manifestations of IgAvasculitis: a new target for therapy? Mol Immunol. 2022;143:114-121.
  47. Zhu L, Zhai YL, Wang FM, et al. Variants in complement factor H and complement factor H-related protein genes, CFHR3 and CFHR1, affect complement activation in IgA nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2015;26: 1195-1204.
  48. Zhu L, Guo WY, Shi SF, et al. Circulating complement factor H-related protein 5 levels contribute to development and progression of IgA nephropathy. Kidney Int. 2018;94:150-158.
  49. Medjeral-Thomas NR, Lomax-Browne HJ, Beckwith H, et al. Circulating complement factor H-related proteins 1 and 5 correlate with disease activity in IgA nephropathy. Kidney Int. 2017;92:942-952.
  50. Medjeral-Thomas NR, Troldborg A, Constantinou N, et al. Progressive IgA nephropathy is associated with low circulating mannan-binding lectin-associated serine protease-3 (MASP-3) and increased glomerular factor H-related protein-5 (FHR5) deposition. Kidney Int Rep. 2018;3: 426-438.
  51. Tan L, Tang Y, Pei G, et al. A multicenter, prospective, observational study to determine association of mesangial C1q deposition with renal outcomes in IgA nephropathy. Sci Rep. 2021;11:5467.
  52. Lee HJ, Choi SY, Jeong KH, et al. Association of C1q deposition with renal outcomes in IgA nephropathy. Clin Nephrol. 2013;80:98-104.
  53. Barbour SJ, Coppo R, Zhang H, et al. Application of the International IgA Nephropathy Prediction Tool one or two years post-biopsy. Kidney Int. 2022;102:160-172.
  54. Barbour SJ, Canney M, Coppo R, et al. Improving treatment decisions using personalized risk assessment from the International Nephropathy Prediction Tool. Kidney Int. 2020;98:1009-1019.
  55. Selvaskandan H, Shi S, Twaij S, et al. Monitoring immune responses in IgA nephropathy: biomarkers to guide management. Front Immunol. 2020;11:572754.
  56. Patel DM, Cantley L, Moeckel G, et al. IgA vasculitis complicated by acute kidney failure with thrombotic microangiopathy: successful use of eculizumab. J Nephrol. 2021;34:2141-2145.
  57. Selvaskandan H, Kay Cheung C, Dormer J, et al. Inhibition of the lectin pathway of the complement system as a novel approach in the management of IgA vasculitis-associated nephritis. Nephron. 2020;144: 453-458.
  58. Herzog AL, Wanner C, Amann K, et al. First treatment of relapsing rapidly progressive IgA nephropathy with eculizumab after living kidney donation: a case report. Transplant Proc. 2017;49:1574-1577.
  59. Nakamura H, Anayama M, Makino M, et al. Atypical hemolytic uremic syndrome associated with complement factor H mutation and IgA nephropathy: a case report successfully treated with eculizumab. Nephron. 2018;138:324-327.
  60. Matsumura D, Tanaka A, Nakamura T, et al. Coexistence of atypical hemolytic uremic syndrome and crescentic IgA nephropathy treated with eculizumab: a case report. Clin Nephrol Case Stud. 2016;4:24-28.
  61. Rosenblad T, Rebetz J, Johansson M, et al. Eculizumab treatment for rescue of renal function in IgA nephropathy. Pediatr Nephrol. 2014;29: 2225-2228.
  62. Ring T, Pedersen BB, Salkus G, et al. Use of eculizumab in crescentic IgA nephropathy: proof of principle and conundrum? Clin Kidney J. 2015;8: 489-491.
  63. Lafayette RA, Rovin BH, Reich HN, et al. Safety, tolerability and efficacy of narsoplimab, a novel MASP-2 inhibitor for the treatment of IgA nephropathy. Kidney Int Rep. 2020;5:2032-2041.
  64. Barratt J, Rovin B, Zhang H, et al. POS-546 Efficacy and safety of iptacopan in IgA nephropathy: results of a randomized double-blind placebo-controlled phase 2 study at 6 months. Kidney Int Rep. 2022;7: S236.
  65. Kistler AD, Salant DJ. Complement activation and effector pathways in membranous nephropathy. Kidney Int. 2024;105:473-483.
  66. Salant DJ, Belok S, Madaio MP, et al. A new role for complement in experimental membranous nephropathy in rats. J Clin Invest. 1980;66: 1339-1350.
  67. Groggel GC, Adler S, Rennke HG, et al. Role of the terminal complement pathway in experimental membranous nephropathy in the rabbit. J Clin Invest. 1983;72:1948-1957.
  68. Cybulsky AV, Quigg RJ, Salant DJ. The membrane attack complex in complement-mediated glomerular epithelial cell injury: formation and stability of C5b-9 and C5b-7 in rat membranous nephropathy. J Immunol. 1986;137:1511-1516.
  69. Saran AM, Yuan H, Takeuchi E, et al. Complement mediates nephrin redistribution and actin dissociation in experimental membranous nephropathy. Kidney Int. 2003;64:2072-2078.
  70. Huang CC, Lehman A, Albawardi A, et al. IgG subclass staining in renal biopsies with membranous glomerulonephritis indicates subclass switch during disease progression. Mod Pathol. 2013;26:799805.
  71. Bally S, Debiec H, Ponard D, et al. Phospholipase A2 receptor-related membranous nephropathy and mannan-binding lectin deficiency. J Am Soc Nephrol. 2016;27:3539-3544.
  72. Espinosa-Hernandez M, Ortega-Salas R, Lopez-Andreu M, et al. C4d as a diagnostic tool in membranous nephropathy. Nefrologia. 2012;32:295299.
  73. Val-Bernal JF, Garijo MF, Val D, et al. C4d immunohistochemical staining is a sensitive method to confirm immunoreactant deposition in formalin-fixed paraffin-embedded tissue in membranous glomerulonephritis. Histol Histopathol. 2011;26:1391-1397.
  74. Haddad G, Lorenzen JM, Ma H, et al. Altered glycosylation of IgG4 promotes lectin complement pathway activation in anti-PLA2R1associated membranous nephropathy. J Clin Invest. 2021;131: e140453.
  75. Gao S, Cui Z, Zhao MH. Complement C3a and C3a receptor activation mediates podocyte injuries in the mechanism of primary membranous nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2022;33:1742-1756.
  76. Hayashi N, Okada K, Matsui Y, et al. Glomerular mannose-binding lectin deposition in intrinsic antigen-related membranous nephropathy. Nephrol Dial Transplant. 2018;33:832-840.
  77. Sethi S, Madden B, Debiec H, et al. Protocadherin 7-associated membranous nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2021;32:1249-1261.
  78. Hanset N, Aydin S, Demoulin N, et al. Podocyte antigen staining to identify distinct phenotypes and outcomes in membranous nephropathy: a retrospective multicenter cohort study. Am J Kidney Dis. 2020;76:624-635.
  79. Sethi S. Membranous nephropathy: a single disease or a pattern of injury resulting from different diseases. Clin Kidney J. 2021;14:2166-2169.
  80. Seifert L, Zahner G, Meyer-Schwesinger C, et al. The classical pathway triggers pathogenic complement activation in membranous nephropathy. Nat Commun. 2023;14:473.
  81. Saleem M, Shaikh S, Hu Z, et al. Post-transplant thrombotic microangiopathy due to a pathogenic mutation in complement Factor I in a patient with membranous nephropathy: case report and review of literature. Front. Immunol. 2022;13:909503.
  82. Birmingham DJ, Irshaid F, Nagaraja HN, et al. The complex nature of serum C3 and C4 as biomarkers of lupus renal flare. Lupus. 2010;19: 1272-1280.
  83. Kostopoulou M, Ugarte-Gil MF, Pons-Estel B, et al. The association between lupus serology and disease outcomes: a systematic literature review to inform the treat-to-target approach in systemic lupus erythematosus. Lupus. 2022;31:307-318.
  84. Macedo AC, Isaac L. Systemic lupus erythematosus and deficiencies of early components of the complement classical pathway. Front Immunol. 2016;7:55.
  85. Ling GS, Crawford G, Buang N, et al. C1q restrains autoimmunity and viral infection by regulating CD8(+) T cell metabolism. Science. 2018;360:558-563.
  86. Castrejón I, Tani C, Jolly M, et al. Indices to assess patients with systemic lupus erythematosus in clinical trials, long-term observational studies, and clinical care. Clin Exp Rheumatol. 2014;32. S-85-95.
  87. Weinstein A, Alexander RV, Zack DJ. A review of complement activation in SLE. Curr Rheumatol Rep. 2021;23:16.
  88. Maslen T, Bruce IN, D’Cruz D, et al. Efficacy of belimumab in two serologically distinct high disease activity subgroups of patients with systemic lupus erythematosus: post-hoc analysis of data from the phase III programme. Lupus Sci Med. 2021;8:e00045.
  89. van Vollenhoven RF, Petri MA, Cervera R, et al. Belimumab in the treatment of systemic lupus erythematosus: high disease activity predictors of response. Ann Rheum Dis. 2012;71:1343-1349.
  90. Dall’Era M, Stone D, Levesque V, et al. Identification of biomarkers that predict response to treatment of lupus nephritis with mycophenolate mofetil or pulse cyclophosphamide. Arthritis Care Res. 2011;63:351357.
  91. Wisnieski JJ, Baer AN, Christensen J, et al. Hypocomplementemic urticarial vasculitis syndrome. Clinical and serologic findings in 18 patients. Medicine. 1995;74:24-41.
  92. Pickering MC, Ismajli M, Condon MB, et al. Eculizumab as rescue therapy in severe resistant lupus nephritis. Rheumatology. 2015;54: 2286-2288.
  93. Coppo R, Peruzzi L, Amore A, et al. Dramatic effects of eculizumab in a child with diffuse proliferative lupus nephritis resistant to conventional therapy. Pediatr Nephrol. 2015;30:167-172.
  94. Giles JL, Choy E, van den Berg C, et al. Functional analysis of a complement polymorphism (rs17611) associated with rheumatoid arthritis. J Immunol. 2015;194:3029-3034.
  95. Toy CR, Song H, Nagaraja HN, et al. The influence of an elastasesensitive complement C5 variant on lupus nephritis and its flare. Kidney Int Rep. 2021;6:2105-2113.
  96. Pickering MC, Walport MJ. Links between complement abnormalities and systemic lupus erythematosus. Rheumatology (Oxford). 2000;39:133-141.
  97. Manzi S, Navratil JS, Ruffing MJ, et al. Measurement of erythrocyte C4d and complement receptor 1 in systemic lupus erythematosus. Arthritis Rheum. 2004;50:3596-3604.
  98. Tedesco F, Borghi MO, Gerosa M, et al. Pathogenic role of complement in antiphospholipid syndrome and therapeutic implications. Front Immunol. 2018;9:1388.
  99. Chaturvedi S, Brodsky RA, McCrae KR. Complement in the pathophysiology of the antiphospholipid syndrome. Front Immunol. 2019;10:449.
  100. Meroni PL, Macor P, Durigutto P, et al. Complement activation in antiphospholipid syndrome and its inhibition to prevent rethrombosis after arterial surgery. Blood. 2016;127:365-367.
  101. Ruffatti A, Tarzia V, Fedrigo M, et al. Evidence of complement activation in the thrombotic small vessels of a patient with catastrophic antiphospholipid syndrome treated with eculizumab. Autoimmun Rev. 2019;18:561-563.
  102. Breen KA, Seed P, Parmar K, et al. Complement activation in patients with isolated antiphospholipid antibodies or primary antiphospholipid syndrome. Thromb Haemost. 2012;107:423-429.
  103. Oku K, Atsumi T, Bohgaki M, et al. Complement activation in patients with primary antiphospholipid syndrome. Ann Rheum Dis. 2009;68: 1030-1035.
  104. Lonati PA, Scavone M, Gerosa M, et al. Blood cell-bound C4d as a marker of complement activation in patients with the antiphospholipid syndrome. Front Immunol. 2019;10:773.
  105. Ruffatti A, Tonello M, Calligaro A, et al. High plasma C5a and C5b-9 levels during quiescent phases are associated to severe antiphospholipid syndrome subsets. Clin Exp Rheumatol. 2022;40:20882096.
  106. Nalli C, Lini D, Andreoli L, et al. Low preconception complement levels are associated with adverse pregnancy outcomes in a multicenter study of 260 pregnancies in 197 women with antiphospholipid syndrome or carriers of antiphospholipid antibodies. Biomedicines. 2021;9:671.
  107. Kim MY, Guerra MM, Kaplowitz E, et al. Complement activation predicts adverse pregnancy outcome in patients with systemic lupus erythematosus and/or antiphospholipid antibodies. Ann Rheum Dis. 2018;77:549-555.
  108. López-Benjume B, Rodríguez-Pintó I, Amigo MC, et al. Eculizumab use in catastrophic antiphospholipid syndrome (CAPS): descriptive analysis from the “CAPS Registry.”. Autoimmun Rev. 2022;21:103055.
  109. Tektonidou MG, Andreoli L, Limper M, et al. EULAR recommendations for the management of antiphospholipid syndrome in adults. Ann Rheum Dis. 2019;78:1296-1304.
  110. Meroni PL, Borghi MO, Raschi E, et al. Pathogenesis of antiphospholipid syndrome: understanding the antibodies. Nat Rev Rheumatol. 2011;7: 330-339.
  111. Chen M, Jayne DRW, Zhao MH. Complement in ANCA-associated vasculitis: mechanisms and implications for management. Nat Rev Nephrol. 2017;13:359-367.
  112. Xing GQ, Chen M, Liu G, et al. Complement activation is involved in renal damage in human antineutrophil cytoplasmic autoantibody associated pauci-immune vasculitis. J Clin Immunol. 2009;29:282-291.
  113. Gou SJ, Yuan J, Chen M, et al. Circulating complement activation in patients with anti-neutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis. Kidney Int. 2013;83:129-137.
  114. Xiao H, Schreiber A, Heeringa P, et al. Alternative complement pathway in the pathogenesis of disease mediated by anti-neutrophil cytoplasmic autoantibodies. Am J Pathol. 2007;170:52-64.
  115. Schreiber A, Xiao H, Jennette JC, et al. C5a receptor mediates neutrophil activation and ANCA-induced glomerulonephritis. J Am Soc Nephrol. 2009;20:289-298.
  116. Merkel PA, Niles J, Jimenez R, et al. Adjunctive treatment with avacopan, an oral C5a receptor inhibitor, in patients with antineutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis. ACR Open Rheumatol. 2020;2:662-671.
  117. Jayne DRW, Bruchfeld AN, Harper L, et al. Randomized trial of C5a receptor inhibitor avacopan in ANCA-associated vasculitis. J Am Soc Nephrol. 2017;28:2756-2767.
    117a. Genest DS, Patriquin CJ, Licht C, et al. Renal thrombotic microangiopathy: a review. Am J Kidney Dis. 2023;81:591-605.
  118. Brocklebank V, Kumar G, Howie AJ, et al. Long-term outcomes and response to treatment in diacylglycerol kinase epsilon nephropathy. Kidney Int. 2020;97:1260-1274.
  119. Blanc C, Roumenina LT, Ashraf Y, et al. Overall neutralization of complement factor H by autoantibodies in the acute phase of the autoimmune form of atypical hemolytic uremic syndrome. J Immunol. 2012;189:3528-3537.
  120. Noris M, Galbusera M, Gastoldi S, et al. Dynamics of complement activation in aHUS and how to monitor eculizumab therapy. Blood. 2014;124:1715-1726.
  121. Galbusera M, Noris M, Gastoldi S, et al. An ex vivo test of complement activation on endothelium for individualized eculizumab therapy in hemolytic uremic syndrome. Am J Kidney Dis. 2019;74:56-72.
  122. Gavriilaki E, Yuan X, Ye Z, et al. Modified Ham test for atypical hemolytic uremic syndrome. Blood. 2015;125:3637-3646.
  123. Caprioli J, Noris M, Brioschi S, et al. Genetics of HUS: The impact of MCP, CFH, and IF mutations on clinical presentation, response to treatment, and outcome. Blood. 2006;108:1267-1279.
  124. Esparza-Gordillo J, Goicoechea de Jorge E, Buil A, et al. Predisposition to atypical hemolytic uremic syndrome involves the concurrence of different susceptibility alleles in the regulators of complement activation gene cluster in 1q32. Hum Mol Genet. 2005;14:703-712.
  125. Arjona E, Huerta A, Goicoechea de Jorge E, et al. Familial risk of developing atypical hemolytic-uremic syndrome. Blood. 2020;136: 1558-1561.
  126. Zuber J, Frimat M, Caillard S, et al. Use of highly individualized complement blockade has revolutionized clinical outcomes after kidney transplantation and renal epidemiology of atypical hemolytic uremic syndrome. J Am Soc Nephrol. 2019;30:2449-2463.
  127. Ariceta G, Fakhouri F, Sartz L, et al. Eculizumab discontinuation in atypical haemolytic uraemic syndrome: TMA recurrence risk and renal outcomes. Clin Kidney J. 2021;14:2075-2084.
  128. Sullivan M, Rybicki LA, Winter A, et al. Age-related penetrance of hereditary atypical hemolytic uremic syndrome. Ann Hum Genet. 2011;75:639-647.
  129. Fakhouri F, Fila M, Provôt F, et al. Pathogenic variants in complement genes and risk of atypical hemolytic uremic syndrome relapse after eculizumab discontinuation. Clin J Am Soc Nephrol. 2017;12:50-59.
  130. Donne RL, Abbs I, Barany P, et al. Recurrence of hemolytic uremic syndrome after live related renal transplantation associated with subsequent de novo disease in the donor. Am J Kidney Dis. 2002;40:E22.
  131. Nishimura J, Yamamoto M, Hayashi S, et al. Genetic variants in C5 and poor response to eculizumab. N Engl J Med. 2014;370:632-639.
  132. Legendre CM, Licht C, Muus P, et al. Terminal complement inhibitor eculizumab in atypical hemolytic-uremic syndrome. N Engl J Med. 2013;368:2169-2181.
  133. Duineveld C , Verhave JC, Berger SP, et al. Living donor kidney transplantation in atypical hemolytic uremic syndrome: a case series. Am J Kidney Dis. 2017;70:770-777.
  134. Ariceta G , Dixon BP , Kim SH , et al. The long-acting C 5 inhibitor, ravulizumab, is effective and safe in pediatric patients with atypical hemolytic uremic syndrome naïve to complement inhibitor treatment. Kidney Int. 2021;100:225-237.
  135. Rondeau E, Scully M, Ariceta G, et al. The long-acting C5 inhibitor, Ravulizumab, is effective and safe in adult patients with atypical hemolytic uremic syndrome naïve to complement inhibitor treatment. Kidney Int. 2020;97:1287-1296.
  136. Fakhouri F, Fila M, Hummel A, et al. Eculizumab discontinuation in children and adults with atypical hemolytic-uremic syndrome: a prospective multicenter study. Blood. 2021;137:2438-2449.
  137. Chaturvedi S, Dhaliwal N, Hussain S, et al. Outcomes of a cliniciandirected protocol for discontinuation of complement inhibition therapy in atypical hemolytic uremic syndrome. Blood Adv. 2021;5:1504-1512.
  138. Gutstein NL, Wofsy D. Administration of F(ab’)2 fragments of monoclonal antibody to L3T4 inhibits humoral immunity in mice without depleting L3T4+ cells. J Immunol. 1986;137:3414-3419.
  139. Kielstein JT, Beutel G, Fleig S, et al. Best supportive care and therapeutic plasma exchange with or without eculizumab in Shiga-toxin-producing E. coli O104:H4 induced haemolytic-uraemic syndrome: an analysis of the German STEC-HUS registry. Nephrol Dial Transplant. 2012;27:38073815.
  140. Yesilbas O, Yozgat CY , Akinci N , et al. Acute myocarditis and eculizumab caused severe cholestasis in a 17-month-old child who has hemolytic uremic syndrome associated with shiga toxin-producing Escherichia coli. J Pediatr Intensive Care. 2021;10:216-220.
  141. Mauras M, Bacchetta J, Duncan A, et al. Escherichia coli-associated hemolytic uremic syndrome and severe chronic hepatocellular cholestasis: complication or side effect of eculizumab? Pediatr Nephrol. 2019;34:1289-1293.
  142. Le Clech A, Simon-Tillaux N, Provôt F, et al. Atypical and secondary hemolytic uremic syndromes have a distinct presentation and no common genetic risk factors. Kidney Int. 2019;95:1443-1452.
  143. Cavero T, Rabasco C, López A, et al. Eculizumab in secondary atypical haemolytic uraemic syndrome. Nephrol Dial Transplant. 2017;32:466474.
  144. Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO) Glomerular Diseases Work Group. KDIGO 2021 Clinical Practice Guideline for the Management of Glomerular Diseases. Kidney Int. 2021;100(4S):S1S276.
  145. Zand L, Fervenza FC, Nasr SH, et al. Membranoproliferative glomerulonephritis associated with autoimmune diseases. J Nephrol. 2014;27:165-171.
  146. Nasr SH, Radhakrishnan J, D’Agati VD. Bacterial infection-related glomerulonephritis in adults. Kidney Int. 2013;83:792-803.
  147. Nasr SH, Satoskar A, Markowitz GS, et al. Proliferative glomerulonephritis with monoclonal IgG deposits. J Am Soc Nephrol. 2009;20:2055-2064.
  148. Meuleman MS, Vieira-Martins P, El Sissy C, et al. Rare variants in complement gene in C3 glomerulopathy and immunoglobulinmediated membranoproliferative GN. Clin J Am Soc Nephrol. 2023;18: 1435-1445.
  149. latropoulos P, Noris M, Mele C, et al. Complement gene variants determine the risk of immunoglobulin-associated MPGN and C3 glomerulopathy and predict long-term renal outcome. Mol Immunol. 2016;71:131-142.
  150. Bu F, Borsa NG, Jones MB, et al. High-throughput genetic testing for thrombotic microangiopathies and C3 glomerulopathies. J Am Soc Nephrol. 2016;27:1245-1253.
  151. Gale DP, Goicoechea de Jorge E, Cook HT, et al. Identification of a mutation in complement factor H-related protein 5 in patients of Cypriot origin with glomerulonephritis. Lancet. 2010;376:794-801.
  152. Malik TH, Lavin PJ, Goicoechea de Jorge E, et al. A hybrid CFHR3-1 gene causes familial C3 glomerulopathy. J Am Soc Nephrol. 2012;23:11551160.
  153. Tortajada A , Yébenes H, Abarrategui-Garrido C , et al. C 3 glomerulopathy-associated CFHR1 mutation alters FHR oligomerization and complement regulation. J Clin Invest. 2013;123:2434-2446.
  154. Chen Q, Wiesener M, Eberhardt HU , et al. Complement factor H-related hybrid protein deregulates complement in dense deposit disease. J Clin Invest. 2014;124:145-155.
  155. Togarsimalemath SK, Sethi SK, Duggal R, et al. A novel CFHR1-CFHR5 hybrid leads to a familial dominant C3 glomerulopathy. Kidney Int. 2017;92:876-887.
  156. Martínez-Barricarte R, Heurich M, Valdes-Cañedo F, et al. Human C3 mutation reveals a mechanism of dense deposit disease pathogenesis and provides insights into complement activation and regulation. J Clin Invest. 2010;120:3702-3712.
  157. Chauvet S , Roumenina LT, Bruneau S , et al. A familial C3GN secondary to defective C3 regulation by complement receptor 1 and complement Factor H. J Am Soc Nephrol. 2016;27:1665-1677.
  158. Levy M, Halbwachs-Mecarelli L, Gubler MC, et al. H deficiency in two brothers with atypical dense intramembranous deposit disease. Kidney Int. 1986;30:949-956.
  159. Ault BH, Schmidt BZ, Fowler NL, et al. Human factor H deficiency. Mutations in framework cysteine residues and block in H protein secretion and intracellular catabolism. J Biol Chem. 1997;272:2516825175.
  160. Zhang Y , Kremsdorf RA, Sperati CJ, et al. Mutation of complement factor B causing massive fluid-phase dysregulation of the alternative complement pathway can result in atypical hemolytic uremic syndrome. Kidney Int. 2020;98:1265-1274.
  161. Levine AP, Chan MMY, Sadeghi-Alavijeh O, et al. Large-scale wholegenome sequencing reveals the genetic architecture of primary membranoproliferative GN and C3 glomerulopathy. J Am Soc Nephrol. 2020;31:365-373.
  162. Finn JE, Mathieson PW. Molecular analysis of C3 allotypes in patients with nephritic factor. Clin Exp Immunol. 1993;91:410-414.
  163. Hocking HG, Herbert AP, Kavanagh D, et al. Structure of the N -terminal region of complement factor H and conformational implications of disease-linked sequence variations. J Biol Chem. 2008;283:9475-9487.
  164. Heurich M, Martínez-Barricarte R, Francis NJ, et al. Common polymorphisms in C3, factor B, and factor H collaborate to determine systemic complement activity and disease risk. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108:8761-8766.
  165. Ding Y, Zhao W, Zhang T, et al. A haplotype in CFH family genes confers high risk of rare glomerular nephropathies. Sci Rep. 2017;7:6004.
  166. Marinozzi MC, Chauvet S, Le Quintrec M, et al. C5 nephritic factors drive the biological phenotype of C3 glomerulopathies. Kidney Int. 2017;92: 1232-1241.
    166a. Hauer JJ, Zhang Y, Goodfellow R, et al. Defining nephritic factors as diverse drivers of systemic complement dysregulation in C3 glomerulopathy. Kidney Int Rep. 2023;9:464-477.
  167. Donadelli R, Pulieri P, Piras R, et al. Unraveling the molecular mechanisms underlying complement dysregulation by nephritic factors in C3G and IC-MPGN. Front Immunol. 2018;9:2329.
  168. Chauvet S, Hauer JJ, Petitprez F, et al. Results from a nationwide retrospective cohort measure the impact of C3 and soluble C5b-9 levels on kidney outcomes in C3 glomerulopathy. Kidney Int. 2022;102:904-916.
  169. Garam N, Prohászka Z, Szilágyi Á, et al. Validation of distinct pathogenic patterns in a cohort of membranoproliferative glomerulonephritis patients by cluster analysis. Clin Kidney J. 2020;13:225-234.
  170. Iatropoulos P, Daina E, Curreri M, et al. Cluster analysis identifies distinct pathogenetic patterns in C3 glomerulopathies/immune complexmediated membranoproliferative GN. J Am Soc Nephrol. 2018;29:283-294.
  171. Chauvet , Berthaud , Devriese , et al. Anti-factor B antibodies and acute postinfectious GN in children. J Am Soc Nephrol. 2020;31:829-840.
    171a. Chauvet , Frémeaux-Bacchi V, Petitprez F, et al. Treatment of B-cell disorder improves renal outcome of patients with monoclonal gammopathy-associated C3 glomerulopathy. Blood. 2017;129:14371447.
  172. Caravaca-Fontán F, Lucientes L, Serra N, et al. C3 glomerulopathy associated with monoclonal gammopathy: impact of chronic histologic lesions and beneficial effects of clone-targeted therapies. Nephrol Dial Transplant. 2021;37:2128-2137.
  173. Smith RJH, Appel GB, Blom AM, et al. C3 glomerulopathyunderstanding a rare complement-driven renal disease. Nat Rev Nephrol. 2019;15:129-143.
  174. Servais A, Noël LH, Roumenina LT, et al. Acquired and genetic complement abnormalities play a critical role in dense deposit disease and other C3 glomerulopathies. Kidney Int. 2012;82:454-464.
  175. Békássy ZD, Kristoffersson AC, Rebetz J, et al. Aliskiren inhibits reninmediated complement activation. Kidney Int. 2018;94:689-700.
  176. Bomback AS, Santoriello D, Avasare RS, et al. C3 glomerulonephritis and dense deposit disease share a similar disease course in a large United States cohort of patients with C3 glomerulopathy. Kidney Int. 2018;93: 977-985.
  177. Caravaca-Fontán F, Trujillo H, Alonso M, et al. Validation of a histologic scoring index for C3 glomerulopathy. Am J Kidney Dis. 2021;77:684-695. e681.
  178. Rabasco C, Cavero T, Román E, et al. Effectiveness of mycophenolate mofetil in C3 glomerulonephritis. Kidney Int. 2015;88:1153-1160.
  179. Avasare RS, Canetta PA, Bomback AS, et al. Mycophenolate mofetil in combination with steroids for treatment of C3 glomerulopathy: a case series. Clin J Am Soc Nephrol. 2018;13:406-413.
  180. Caravaca-Fontán F, Díaz-Encarnación MM, Lucientes L , et al. Mycophenolate mofetil in C3 glomerulopathy and pathogenic drivers of the disease. Clin J Am Soc Nephrol. 2020;15:1287-1298.
  181. Bharati J, Tiewsoh K, Kumar A, et al. Usefulness of mycophenolate mofetil in Indian patients with C3 glomerulopathy. Clin Kidney J. 2019;12:483-487.
  182. Caliskan Y, Torun ES, Tiryaki TO, et al. Immunosuppressive treatment in C3 glomerulopathy: is it really effective? Am J Nephrol. 2017;46:96-107.
  183. Khandelwal P, Bhardwaj S, Singh G, et al. Therapy and outcomes of C3 glomerulopathy and immune-complex membranoproliferative glomerulonephritis. Pediatr Nephrol. 2021;36:591-600.
  184. Ravindran A, Fervenza FC, Smith RJH, et al. C3 glomerulopathy: ten years’ experience at Mayo Clinic. Mayo Clin Proc. 2018;93:991-1008.
  185. Le Quintrec , Lapeyraque , Lionet , et al. Patterns of clinical response to eculizumab in patients with C3 glomerulopathy. Am J Kidney Dis. 2018;72:84-92.
  186. Bomback AS, Smith RJ, Barile GR, et al. Eculizumab for dense deposit disease and C3 glomerulonephritis. Clin J Am Soc Nephrol. 2012;7:748-756.
  187. Ruggenenti P, Daina E, Gennarini A, et al. C5 convertase blockade in membranoproliferative glomerulonephritis: a single-arm clinical trial. Am J Kidney Dis. 2019;74:224-238.
  188. Licht C, Heinen S, Józsi M, et al. Deletion of Lys224 in regulatory domain 4 of Factor H reveals a novel pathomechanism for dense deposit disease (MPGN II). Kidney Int. 2006;70:42-50.
  189. Bomback, A. Orally administered C5AR inhibitor avacopan in a randomized, double-blind, placebo-controlled study (ACCOLADE) for treatment of C3 glomerulopathy. European Renal AssociationEuropean Dialysis and Transplant Association 2021 Congress. Virtual. Oral Presentation LB001. Accessed July 8, 2024. https://era-apps.m-anage.com/eraedta21/en-GB/pag/presentation/493961
  190. Wong E, Nester C, Cavero T, et al. Iptacopan, a novel oral complement alternative pathway factor B inhibitor, significantly reduces urinary
    protein excretion and C3 Deposit Scores in native and transplanted kidneys in patients with C3 glomerulopathy. Presented at the American Society of Nephrology (ASN) 2021 Annual Meeting. J Am Soc Nephrol. 2021;32 (Abstract Supplement):B8.
  191. Dixon BP, Greenbaum LA, Huang L, et al. C3 inhibition with pegcetacoplan targets the underlying disease process of C3 glomerulopathy (C3G) and improves proteinuria. ASN Kidney Week. Abstract PO1852. Accessed June 19, 2024. https://www.asn-online.org/ education/kidneyweek/2020/program-abstract.aspx?controlld=343 9464
  192. Noris M, Donadelli R, Remuzzi G. Autoimmune abnormalities of the alternative complement pathway in membranoproliferative
    glomerulonephritis and C3 glomerulopathy. Pediatr Nephrol. 2019;34: 1311-1323.
  193. Caravaca-Fontán F, Díaz-Encarnación M, Cabello V, et al. Longitudinal change in proteinuria and kidney outcomes in C3 glomerulopathy. Nephrol Dial Transplant. 2022;37:1270-1280.
  194. Heerspink HJL, Greene T, Tighiouart H, et al. Change in albuminuria as a surrogate endpoint for progression of kidney disease: a meta-analysis of treatment effects in randomised clinical trials. Lancet Diabetes Endocrinol. 2019;7:128-139.
  195. Reich HN, Troyanov S, Scholey JW, et al. Remission of proteinuria improves prognosis in IgA nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2007;18: 3177-3183.

  1. Correspondence: Marina Vivarelli, Laboratory of Nephrology, Bambino Gesù Children Hospital IRCCS, Piazza S. Onofrio 4, 00165 Rome, Italy. E-mail: marina.vivarelli@opbg.net; or Richard J.H. Smith, Molecular Otolaryngology and Renal Research Laboratories and lowa Institute of Human Genetics, Department of Otolaryngology Head and Neck Surgery, University of lowa, 200 Hawkins Drive, lowa City, lowa 52242, USA. E-mail: Richard-smith@ uiowa.edu
    Additional Conference Participants are listed in the Appendix.


  2. toxin-producing Escherichia coli; TMA, thrombotic microangiopathy.
    biosimilar agents or in phase 4 are also not listed. The studies enroll adults only unless specified.
    Recent data do not support a role for renin in the cleavage of C3 and suggest that the use of aliskiren as a renin inhibitor to decrease complement activity and C3 convertase formation is misguided.

Journal: Kidney International, Volume: 106, Issue: 3
DOI: https://doi.org/10.1016/j.kint.2024.05.015
PMID: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38844295
Publication Date: 2024-06-05

The role of complement in kidney disease: conclusions from a Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO) Controversies Conference

Marina Vivarelli , Jonathan Barratt , Laurence H. Beck Jr , Fadi Fakhouri , Daniel P. Gale , Elena Goicoechea de Jorge , Marta Mosca , Marina Noris , Matthew C. Pickering , Katalin Susztak , Joshua M. Thurman , Michael Cheung , Jennifer M. King , Michel Jadoul , Wolfgang C. Winkelmayer and Richard J.H. Smith ; for Conference Participants Laboratory of Nephrology, Bambino Gesù Children’s Hospital, IRCCS, Rome, Italy; Department of Cardiovascular Sciences, University of Leicester, Leicester, UK; Section of Nephrology, Department of Medicine, Boston University Chobanian & Avedisian School of Medicine and Boston Medical Center, Boston, Massachusetts, USA; Department of Nephrology, Centre Hospitalier Universitaire, Nantes, France; INSERM UMR S1064, Nantes, France; Centre for Kidney and Bladder Health, University College London, UK; Department of Immunology, Ophthalmology and ORL, Complutense University, Madrid, Spain; Area of Chronic Diseases and Transplantation, Research Institute Hospital 12 de Octubre (imas12), Madrid, Spain; Department of Clinical and Experimental Medicine-Rheumatology Unit, University of Pisa, Pisa, Italy; Clinical Research Center for Rare Diseases Aldo e Cele Daccò, Istituto di Ricerche Farmacologiche Mario Negri IRCCS, Ranica, Italy; Centre for Inflammatory Disease, Department of Immunology and Inflammation, Imperial College, Hammersmith Campus, London, UK; Division of Nephrology, Department of Medicine, Perelman School of Medicine, University of Pennsylvania, Philadelphia, Pennsylvania, USA; Division of Nephrology and Hypertension, University of Colorado Anschutz Medical Campus, Aurora, Colorado, USA; KDIGO, Brussels, Belgium; Cliniques Universitaires Saint Luc, Université Catholique de Louvain, Brussels, Belgium; Selzman Institute for Kidney Health, Section of Nephrology, Department of Medicine, Baylor College of Medicine, Houston, Texas, USA; Molecular Otolaryngology and Renal Research Laboratories, Carver College of Medicine, University of lowa, lowa City, Iowa, USA; Department of Internal Medicine, Division of Nephrology, Carver College of Medicine, University of lowa, lowa City, lowa, USA; and Department of Pediatrics, Division of Nephrology, Carver College of Medicine, University of lowa, lowa City, lowa, USA

Uncontrolled complement activation can cause or contribute to glomerular injury in multiple kidney diseases. Although complement activation plays a causal role in atypical hemolytic uremic syndrome and C3 glomerulopathy, over the past decade, a rapidly accumulating body of evidence has shown a role for complement activation in multiple other kidney diseases, including diabetic nephropathy and several glomerulonephritides. The number of available complement inhibitor therapies has also increased during the same period. In 2022, Kidney Diseases: Improving Global Outcomes (KDIGO) convened a Controversies Conference, “The Role of Complement in Kidney Disease,” to address the expanding role of complement dysregulation in the pathophysiology, diagnosis, and management of various glomerular diseases, diabetic
Received 22 December 2023; revised 25 April 2024; accepted 22 May 2024; published online 4 June 2024
nephropathy, and other forms of hemolytic uremic syndrome. Conference participants reviewed the evidence for complement playing a primary causal or secondary role in progression for several disease states and considered how evidence of complement involvement might inform management. Participating patients with various complement-mediated diseases and caregivers described concerns related to life planning, implications surrounding genetic testing, and the need for inclusive implementation of effective novel therapies into clinical practice. The value of biomarkers in monitoring disease course and the role of the glomerular microenvironment in complement response were examined, and key gaps in knowledge and research priorities were identified.
Kidney International (2024) 106, 369-391; https://doi.org/10.1016/ j.kint.2024.05.015
KEYWORDS: complement inhibitor; complement-mediated injury; glomerular injury
© 2024 Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO). Published by Elsevier Inc. on behalf of the International Society of Nephrology. This is an open access article under the CC BY-NC-ND license (http:// creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/).
1n 2015, Kidney Diseases: Improving Global Outcomes (KDIGO) convened a controversies conference on 2 prototypical complement-mediated kidney diseases: atypical hemolytic uremic syndrome (aHUS) and C3 glomerulopathy
(C3G). Since that time, evidence has emerged for a role of complement in the cause or progression of a broader range of kidney diseases, including diabetic nephropathy and a number of glomerulonephritides, with contributions of complement dysfunction ranging from primary causal to secondary driver of progression (Figure 1). The kidney appears to be a prime target of complement dysregulation (Figure 2), as systemic genetic defects in complement regulatory proteins may underlie isolated nephropathies, and multiple forms of kidney disease engage all pathways of the complement system. The unique susceptibility of the kidney to complement-mediated injury may be due to several factors, including high glomerular blood hydrostatic pressure and filtration of plasma in glomerular capillaries, which together lead to high concentrations of complement proteins in close proximity to the glomerular basement membrane. In addition, the presence of fenestrae in glomerular endothelial cells may increase access of large plasma proteins to the glomerular basement membrane. Finally, the glomerular basement membrane does not express intrinsic complement regulators, which are present on endothelial cells.
In 2022, KDIGO convened a second controversies conference to discuss the varied and expanding role of complement dysregulation in kidney disease. This timing was pertinent, as complement inhibitor therapies for kidney disease have expanded from eculizumab and its longer-acting derivative ravulizumab (C5 inhibitors used in aHUS) to avacopan (a C5a receptor blocker used in antineutrophil cytoplasmic antibody [ANCA]-associated vasculitis [AAV]) and a number of new therapeutic agents, some of which are in clinical use for other indications (Table 1, Figure 3, and Supplementary Table S1).
At the conference, for each disease considered, participants reviewed the evidence indicating whether complement plays a primary or a secondary role in pathogenesis and progression. Participants also critically examined the value of biomarkers of complement activity in monitoring disease course, whether specific drivers (i.e., genetic or acquired) dysregulate complement activity, and the potential impact/role of the glomerular microenvironment in contributing to the complement response. How current evidence informs management in terms of serological or genetic evaluations or approaches to complement inhibition was described. In addition, patients and caregivers described their experiences and concerns as related to diagnosis, prognosis, and management (Table 2).
The conference provided an opportunity to revisit the current literature on aHUS and C3G to assess whether the guidance outlined in the 2015 conference report requires updating. For primary diseases (C3G, immune complex membranoproliferative glomerulonephritis [IC-MPGN], and complement-mediated forms of HUS), the focus was on new information impacting management since the 2015 meeting. For all diseases, areas of consensus (Supplementary Table S2) and the most clinically relevant knowledge gaps and major priorities for research were identified (Table 3).
Conference plenary presentations are available on the KDIGO website, https://kdigo.org/conferences/controversies-conference-on-complement-in-ckd/.

DIABETIC NEPHROPATHY AND FOCAL SEGMENTAL GLOMERULOSCLEROSIS (FSGS)

Diabetic kidney disease

Although current experimental data do not support complement activation as a primary etiology in diabetic kidney disease (aka diabetic nephropathy), several lines of evidence indicate that it plays a contributory role in disease progression. Activation of the complement cascade has been described in multiple animal models of diabetic nephropathy. Less severe diabetic nephropathy is seen in mice homozygous for the targeted deletion of the C5a or C3aR genes or with pharmacologic inhibitors of complement. limitation of these studies is that mouse models poorly recapitulate human diabetic nephropathy, especially its late stages. Early candidate gene studies have indicated that pathogenic genetic variants in mannan-binding lectin genes are associated with disease progression. In addition, summary data-based Mendelian analysis suggests a causal role for complement in diabetic chronic kidney disease. Consistent with these findings, experimental evidence indicates that hyperglycemia may cause complement activation through enhanced mannan-binding lectin activity and that glycation impairs complement regulation. In patients with diabetic kidney disease, biopsies have shown complement deposits focally in glomeruli, and analyses of kidney gene expression have identified complement gene activation. It remains unclear whether complement is activated by the diabetic milieu or how age, sex at birth, obesity, and infections impact the complement response in diabetic nephropathy and its potential role in endothelial cell damage.

FSGS

In animal models, there is evidence that complement is activated and plays a role in the progression of FSGS. However, animal models do not recapitulate genetic or permeability factor-induced human FSGS. In humans, evidence of complement activation is indicated by biomarker data: plasma C3 levels correlate with disease outcome; kidney biopsies stain positive for complement activation products (mostly in areas of sclerosis); and urine has higher levels of complement activation byproducts. Transcriptional profiling in collapsing FSGS shows hallmarks of inflammation and this may be the form of FSGS in which complement activity is most robust. However, complement gene mutations have not been identified as causative factors in FSGS. It is noteworthy that complement is activated by infection, and infection is often associated with collapsing FSGS.

Clinical implications for management of diabetic kidney disease and FSGS

Evidence supports complement activation in diabetic kidney disease based on studies analyzing urine, plasma, and kidney
Figure 1 | Role of complement in various kidney diseases. Uncontrolled complement activation can cause or contribute to glomerular injury in multiple kidney diseases. (a) The renal glomerulus is a unique capillary bed. The lining glomerular endothelial cells (GECs) differ from most endothelial cells in that they are extraordinarily flattened and densely perforated by transcellular fenestrae, which constitute of their surface area. In addition, because the glomerulus lies between 2 arterioles-an upstream afferent arteriole and a downstream efferent arteriole-hydrostatic pressure is high. These properties contribute, at least in part, to the high permeability of the glomerular capillary wall to water and small solutes, but also to the vulnerability of the glomerulus to complement-mediated (continued)
Prototypical rare diseases
Complement dysfunction has primary role Complement dysfunction is secondary driver of injury
Common multifactorial diseases
aHUS
C3G
Primary IC-MPGN
AAV, SLE IgAN, IgAVN
APS, MN
Secondary TMA Secondary MPGN
Diabetic nephropathy
FSGS
Figure 2| Glomerular pathologies caused by complement dysregulation. Consensus viewpoint comparing rare but prototypical complement-mediated diseases such as atypical hemolytic uremic syndrome (aHUS) and complement component 3 glomerulopathy (C3G) with more complex multifactorial diseases in which complement activation may play a secondary role in contributing to disease burden. The role of complement in multifactorial disease requires validation through clinical trials and studies of complement biomarkers. AAV, antineutrophil cytoplasmic antibody (ANCA)-associated vasculitis; APS, antiphospholipid antibody syndrome; FSGS, focal segmental glomerulosclerosis; IC-MPGN, immune-complex membranoproliferative glomerulonephritis; IgAN, IgA nephropathy; IgAVN, IgA-associated vasculitis with nephritis; MN, membranous nephropathy; MPGN, membranoproliferative glomerulonephritis; SLE, systemic lupus erythematosus; TMA, thrombotic microangiopathy.
Potential impact of complement inhibition
biopsies both in patients and animal models. Kidney biopsies are often obtained from patients with atypical presentations, making reference values difficult to determine. In FSGS and in diabetic nephropathy, the data are limited and can be confounded by phenotypic variation (infection, glycemia, etc.). Future studies should examine complement marker correlation with disease activity and progression, but at present, there is insufficient evidence to enrich trial enrollment based on complement biomarkers. It was generally viewed that complement inhibition is more likely to slow rather than prevent disease progression and that the overall weight of risks to benefits may be more favorable for complement inhibition in FSGS, where there is faster progression and fewer treatment options, than in minimal change disease. For complement-based therapeutic interventions in FSGS, at present, trial enrollment should focus on clinical criteria and target patients with rapidly progressing disease who have failed standard therapy and have no other therapeutic option.
It is not known whether complement inhibition is protective in diabetic nephropathy. Given its prevalence, there is a large unmet need for novel therapeutics, especially for patients who do not respond to current treatments. Meeting participants came to the same conclusion regarding FSGS.
In both conditions, innovative trial designs (such as basket and platform trials) may be useful to evaluate potential benefits in patients showing activation of complement.

IgA NEPHROPATHY AND IgA-ASSOCIATED VASCULITIS WITH NEPHRITIS

Current data suggest that complement activation is equally important in the pathogenesis of IgA nephropathy (IgAN) and IgA-associated vasculitis with nephritis (IgAVN). In most cases of IgAN/IgAVN, complement activation is driven by lectin and/or alternative pathway activation, as demonstrated through extensive evidence from studies of serum, kidney tissue, urine, and genetics in IgAN and kidney, gut, and skin biopsy studies in IgAVN. In both conditions, complement activation due to mesangial immune complex deposition is an important cause of glomerular injury. In IgAV, complement activation also appears to be important in the development of skin and gut lesions. However, the precise relationship between the extent of complement activation and the risk of kidney injury and disease progression in both IgAN and IgAVN requires further validation. Racial or ethnic differences may
Figure 1 | (continued) damage and injury. (b) The complement cascade is constitutively active due to C3 tick-over. Activating complement components cannot distinguish self from nonself, with health relying on regulators of complement activation (RCA) proteins to prevent the occurrence of complement-mediated damage. GECs express decay-accelerating factor, membrane cofactor protein, and cluster of differentiation 59 (CD59); however, complement regulation over the fenestrae is dependent on fluid-phase RCA proteins such as factor H, factor I, C4b binding protein (C4BP), and C1 inhibitor. For each of 6 glomerular diseases (complement component 3 glomerulopathy [C3G]/immunecomplex membranoproliferative glomerulonephritis [IC-MPGN], membranous nephropathy [MN], atypical hemolytic uremic syndrome [aHUS], antineutrophil cytoplasmic antibody [ANCA]-associated vasculitis [AAV], lupus nephritis [LN], and IgA nephropathy [IgAN]), the principal complement pathway is shown, activation of which leads to injury, segueing into a proliferative phase of glomerular damage. If scarring has not occurred, many of these glomerular changes are predicted to be reversible. As a growing number of therapeutic agents targeting different parts of the complement cascade become available, understanding how complement activation contributes to these diseases will be paramount if we are to judiciously use these new drugs to improve patient outcomes. AP, alternative pathway; C1INH, C1 esterase inhibitor; CP, classical pathway; DDD, dense deposit disease; IgAVN, IgA-associated vasculitis with nephritis; LP, lectin pathway; MAC, membrane attack complex; MASP, mannan-binding lectin (MBL)-associated serine protease; MPO, myeloperoxidase; NET, neutrophil extracellular traps; PR3, proteinase 3; TF, tissue factor; TMA, thrombotic microangiopathy; TP, terminal pathway.
Table 1 | Complement inhibitors in clinical development for kidney diseases
Target of inhibition Drug Inhibitor type Mechanism Route Clinical trials
C1 ANX009 Antibody Inhibits C1q substrate interactions SC NCT05780515 (lupus nephritis, phase 1, recruiting)
C3, C3b Pegcetacoplan Peptides conjugated to polyethylene glycol Binds C3 and C3b and prevents interaction and activity of the C3 and C5 convertases of the classical, lectin, and alternative pathways SC twice weekly
NCT05148299 (post-BMT TMA, phase 2, recruiting)
NCT04572854 (post-transplant recurrence C3G or IC-MPGN, phase 2, active not recruiting)
NCT03453619 (C3G) (basket in glomerulopathies, phase 2, completed)
NCT05067127 (C3G or IC-MPGN, phase 3, active not recruiting)
NCT05809531 (C3G or IC-MPGN, phase 3 open-label extension of a previous study, recruiting)
C3 AMY101 Small peptide Binds C3 and blocks its binding to and cleavage by C3 convertases into C3a and C3b IV NCT03316521 (phase 1 healthy male volunteers, completed)
C3 ARO-C3 Small, interfering RNA Inhibits C3 synthesis in the liver SC NCT05083364 (phase 1/2a dose-escalating: healthy volunteers, adult patients with C3G and IgAN, recruiting)
C3b, C5 KP104 Antibody plus factor H regulatory domain Blocks the alternative and terminal pathways IV
NCT05517980 (IgAN and C3G phase 2, not yet recruiting)
NCT05504187 (lupus nephritis phase 2, not yet recruiting)
C5 Cemdisiran Small, interfering RNA Inhibits C5 synthesis in the liver SC NCT03841448 (IgAN, phase 2, completed)
C5 Crovalimab Antibody Prevents cleavage of C5 by the C5 convertase IV, then SC
NCT04958265 (aHUS, phase 3, recruiting, children between 28 days and 17 years of age)
NCT04861259 (aHUS, phase 3, recruiting)
C5 Eculizumab Antibody Prevents cleavage of C5 by the C5 convertase IV
NCT03518203 (HUS post-BMT with multiple organ dysfunction syndrome, phase 2, completed)
NCT01029587 (CAPS to enable kidney transplant, phase 2, completed)
NCT05702996 (HUS secondary to gemcitabine, phase 2, not yet recruiting)
NCT05726916 (HUS secondary to hypertensive emergency, phase 2, not yet recruiting)
NCT02205541 (STEC-HUS, phase 3, completed)
NCT05876351 (aHUS in China, phase 3, recruiting)
C5 Gefurulimab (ALXN1720) Bispecific minibody Binds C5, inhibiting its cleavage into C 5 a and C 5 b . It also binds to albumin, which increases its half-life SC NCT05314231 (proteinuria, phase 1B, completed)
C5 Ravulizumab Antibody Prevents cleavage of C5 by the C5 convertase IV, SC
NCT04564339 (IgAN and LN, phase 2, recruiting)
NCT04743804 (trigger-associated TMA, phase 2, terminated)
NCT04543591 (adult and adolescent post-BMT HUS, phase 3, recruiting)
NCT04557735 (pediatric post-BMT HUS, phase 3, recruiting)
Table 1 | (Continued) Complement inhibitors in clinical development for kidney diseases
Target of inhibition Drug Inhibitor type Mechanism Route Clinical trials
C5 Nomacopan or coversin (rVA576) Small protein Inhibits terminal complement activation by tightly binding to C5 and preventing C5a release and C5b-9 formation, and inhibits leukotriene B4 by capturing the fatty acid within the body of the nomacopan protein SC NCT04784455 (pediatric post-BMT HUS, phase 3, recruiting)
C5a Vilobelimab (IFX-1) Antibody Selectively inhibits C5a activity leaving the MAC intact IV
NCT03712345 (GPA and MPA, phase 2, terminated)
NCT03895801 (GPA and MPA, phase 2, completed)
C5aR1 Avacopan Small molecule Blocks the binding of the anaphylatoxin C5a with the C5aR1 receptor Oral twice daily
NCT02464891 (aHUS on dialysis, phase 2, terminated)
NCT03301467 (C3G, phase 2, completed)
NCT02384317 (IgAN, phase 2, completed)
NCT02994927 (AAV, phase 3, completed)
NCT01363388 (AAV, phase 2, completed)
NCT02222155 (AAV, phase 2, completed)
Factor B IONIS-FB-LRx Antisense oligonucleotide Inhibits liver synthesis of factor B SC
NCT04014335 (IgAN, phase 2, active not recruiting, ASN poster SA-PO926)
NCT05797610 (IgAN, phase 3 recruiting)
Factor B Iptacopan (LNP023) Small molecule Prevents activity of C3 and C5 convertases of the alternative pathway Oral twice daily
NCT04889430 (aHUS, phase 3, recruiting)
NCT03832114 (C3G, phase 2, adults with native or transplanted kidney, extension NCT03955445)
NCT04817618 (C3G, phase 3, adults and adolescents >12 years, recruiting, for adults interim results reported)
NCT05755386 (IC-MPGN, phase 3, adults and adolescents >12 years, recruiting)
NCT03373461 (IgAN, phase 2, completed)
NCT04578834 (IgAN, phase 3, recruitment completed, interim results reported)
NCT04154787 (MN, phase 2, terminated)
NCT05268289 (LN, phase 2, recruiting)
Factor Bb NM8074 Monoclonal antibody By binding Bb, it is able to inhibit both C3 and C5 convertases and the MAC formation IV
NCT06226662 (AAV, phase 2, not yet recruiting)
NCT05647811 (C3G, phase 1b/2a, not yet recruiting)
NCT05684159 (aHUS, phase 2, not yet recruiting)
Factor D BCX10013 Small molecule Prevents formation of C3 and C5 convertases of the alternative pathway more efficiently than BCX9930 Oral once daily NCT06100900 (PNH, phase 1, dose escalation)
Factor D Danicopan (ALXN2040, ACH-4471) Small molecule Prevents formation of C3 and C5 convertases of the alternative pathway Oral twice daily
NCT03124368 (C3G or IC-MPGN, phase 2, completed)
NCT03369236 (C3G or IC-MPGN, phase 2, completed)
NCT03459443 (C3G or IC-MPGN, phase 2, terminated)
Factor D Vemircopan (ALXN2050, ACH0145228) Small molecule Prevents formation of C3 and C5 convertases of the alternative pathway Oral NCT05097989 (IgAN or LN, phase 2, recruiting)
MASP-2 CM338 Monoclonal antibody Blocks initiation of the lectin pathway SC NCT05775042 (IgAN, phase 2, recruiting)
MASP-2 Narsoplimab (OMS721) Antibody Blocks initiation of the lectin pathway IV
NCT05855083 (pediatric post-BMT HUS, phase 2, recruiting)
NCT03205995 (aHUS, phase 3, status unknown)
NCT02682407 (C3G, IgAN, LN, MN, phase 2, status unknown)
NCT03608033 (IgAN, phase 3, terminated)
MASP-3 OMS906 Antibody Blocks initiation of the lectin pathway IV NCT06209736 (C3G, IC-MPGN, phase 2, not yet recruiting)
Renin Aliskiren Small molecule Blocks renin-mediated C3 cleavage Oral NCT04183101 (C3G, phase 2, recruiting)
Factor D Danicopan (ALXN2040, ACH-4471) Small molecule Prevents formation of C3 and C5 convertases of the alternative pathway Oral twice daily
NCT03124368 (C3G or IC-MPGN, phase 2, completed)
NCT03369236 (C3G or IC-MPGN, phase 2, completed)
NCT03459443 (C3G or IC-MPGN, phase 2, terminated)
Factor D Vemircopan (ALXN2050, ACH0145228) Small molecule Prevents formation of C3 and C5 convertases of the alternative pathway Oral NCT05097989 (IgAN or LN, phase 2, recruiting)
MASP-2 CM338 Monoclonal antibody Blocks initiation of the lectin pathway SC NCT05775042 (IgAN, phase 2, recruiting)
MASP-2 Narsoplimab (OMS721) Antibody Blocks initiation of the lectin pathway IV
NCT05855083 (pediatric post-BMT HUS, phase 2, recruiting)
NCT03205995 (aHUS, phase 3, status unknown)
NCT02682407 (C3G, IgAN, LN, MN, phase 2, status unknown)
NCT03608033 (IgAN, phase 3, terminated)
MASP-3 OMS906 Antibody Blocks initiation of the lectin pathway IV NCT06209736 (C3G, IC-MPGN, phase 2, not yet recruiting)
Renin Aliskiren Small molecule Blocks renin-mediated C3 cleavage Oral NCT04183101 (C3G, phase 2, recruiting)
syndrome; GPA, granulomatosis with polyangiitis; HUS, hemolytic uremic syndrome; IC-MPGN, immune-complex membranoproliferative glomerulonephritis; IgAN, IgA nephropathy; IV, intravenous; LN, lupus nephritis; MAC,
membrane attack complex (C5b-9); MASP, mannan-binding lectin-associated serine peptidase; MN, membranous nephropathy; MPA, microscopic polyangiitis; PNH, paroxysmal nocturnal hematuria; SC, subcutaneous; STEC, Shiga toxin-producing Escherichia coli; TMA, thrombotic microangiopathy.
As of March 1, 2024. For eculizumab, completed and published studies are not listed. For all agents, only studies evaluating the diseases covered in this paper are listed, and withdrawn studies are not listed. Studies on generic/ biosimilar agents or in phase 4 are also not listed. The studies enroll adults only unless specified.
Recent data do not support a role for renin in the cleavage of C 3 and suggest that the use of aliskiren as a renin inhibitor to decrease complement activity and C 3 convertase formation is misguided.
Figure 3| Therapeutic inhibitors of complement activity. In the near future, multiple drugs that target the complement system will be available. It is highly likely that drug effect will vary depending on the underlying disease process and patient-specific factors such as the presence of genetic variants in complement genes or autoantibodies to different complement components, which will make precision medicine a possibility. Agents in bold have reached phase 3 or later in development. CD59, complement defense 59; DAF, decay-accelerating factor; FB, factor B; FH, factor H; FI, factor I; MAC, membrane attack complex; MASP, mannan-binding lectin-associated serine peptidase; MBL, mannan-binding lectin; MCP, membrane cofactor protein; TAFla, activated thrombin activatable fibrinolysis inhibitor; THBD, thrombomodulin gene.
play a role, as Clq mesangial deposition has been shown to predict worse outcomes of IgAN only in the Asian population.
Single-center, nonvalidated studies suggest an association in IgAN between worsening outcomes and increased complement activation markers in the kidneys, urine, and blood. These studies need to be independently validated, and biomarkers need to be evaluated to determine whether they could improve the prognostic precision of the International IgAN Risk Prediction Tool.

Clinical implications

In IgAN and IgAVN, there are currently no validated complement-associated biomarkers (kidney biopsy stains, plasma or urinary biomarkers, and genotypes) that inform
prognosis, treatment selection, or monitoring of treatment response.
There is a significant unmet need to evaluate the role of complement therapies in IgAVN, recurrent IgAN/IgAVN post-transplant, and pediatric IgAN/IgAVN. In IgAN, current data show an antiproteinuric effect of complement blockade, supporting further evaluation of complement therapies targeting the lectin, alternative, and terminal complement pathways. The use of complement inhibition may be particularly effective in children, who tend to have a more florid inflammatory component and less sclerotic damage compared with adults. To date, phase 2 and phase 3 clinical trials of complement therapies in IgAN (<200 patients) have suggested a reduction in proteinuria and have not demonstrated significant adverse events (Supplementary Table S1), including, in

Table 2| Patient and caregiver concerns, unmet needs, and perspectives on genetic testing and repeat biopsies

Concerns

  • Kidney diseases for which the role of complement dysregulation is pivotal often have no known effective treatment options, leading to kidney failure and risk of recurrence after kidney transplant
  • Kidney diseases involving complement overactivation can have a profound impact on the daily lives of patients and caregivers, limiting participation in important or meaningful activities
  • For young patients, the lack of natural history data leads to uncertainty regarding course and impact of disease, which can influence decisions on career and family planning
  • Evidence on the correct management of many complement-mediated nephropathies is limited in quantity and quality, and awareness of innovative therapies (either in clinical trials or marketed) is often insufficient
  • Approved agents are not universally available due to limited affordability
  • Lack of awareness of complement-mediated diseases among health care professionals delays diagnosis and hinders optimal management
  • Because complement blocking therapies increase the risk of infection, their long-term use is potentially concerning

Unmet needs

  • A more widespread understanding of and expertise in treating complement-mediated kidney diseases among nephrologists worldwide
  • Natural history and biomarker studies in rare conditions
  • Awareness of existing studies and potential for enrollment among patients and health care providers
  • Trial designs that increase likelihood of receiving active treatment either through ratios other than 1:1 active:placebo or through open-label extension
  • Programs with early access to treatment in the adolescent/pediatric population once safety has been established
  • Availability of innovative treatments judged more likely to be effective than existing options as first-line therapy in aggressive forms of disease
  • Consideration for adopting serial treatment strategies given the heterogeneity of disease course and treatment response within some complementmediated diseases

Genetic testing and screening

  • Opinions and preferences regarding genetic screening and testing are highly variable among patients
  • Some individuals want to know as much as possible about their disease, especially if early diagnosis can lead to better outcomes
  • Others do not, especially if the knowledge is not actionable
  • Whether and how genetic findings could impact insurance or transplant candidacy
  • Accurate information about and understanding of variant-attributable risk of disease are paramount
  • Precluding a living-related transplant or undergoing embryo selection because of an allele that is unlikely to cause disease is undesirable
  • Appropriate and well-informed genetic counseling is crucial, as parents can experience significant psychological burden if they are told that they transmitted a deleterious genetic variant to their child

Repeat biopsy in the setting of a clinical trial

  • In general, patients are reluctant to undergo repeat biopsies, particularly in the setting of atypical hemolytic uremic syndrome, where it may be riskier and where other reliable parameters of response to treatment (e.g., platelet count, lactate dehydrogenase, and serum creatinine) are well established
  • However, particularly in glomerular diseases with less well-established efficacy endpoints and a more gradual disease progression, patients and caregivers recognize the need for histologic proof of a therapeutic agent affecting disease progression and may be motivated to collaborate in developing, through data from repeated biopsies, noninvasive diagnostic approaches (e.g., novel imaging technologies, improved diagnostic biomarkers, and liquid biopsy approaches)
    particular, infections with encapsulated bacteria (where vaccination and/or prophylactic antibiotics may be considered for alternative and terminal pathway inhibitors).

MEMBRANOUS NEPHROPATHY

Primary membranous nephropathy (MN) is driven by the production of autoantibodies and in situ formation of immune complexes, followed by complement activation. In experimental animal models of MN, complement activation after immune complex deposition is essential for the development of podocyte injury and proteinuria, although its role after immune complexes are cleared is not known. In primary MN, activating pathways other than the classical have been considered dominant, as C 1 q is typically absent or minimal. The
presence of C 3 , factor , and properdin by immunostaining on the kidney biopsy supports a role for the alternative pathway. C3 (and C4 when measured) is nearly always found in conjunction with IgG in the subepithelial deposits by immunostaining. In addition to human biopsy data, recent experimental data implicate C 3 a and podocyte C 3 aR and C 5 aR in primary In terms of the lectin pathway, mannanbinding lectin is found in the typical fine granular capillary wall deposit pattern on primary MN biopsies. In vitro, human IgG4 anti-phospholipase A2 receptor lacking terminal N-linked galactose can bind mannan-binding lectin and activate the lectin pathway to cause podocyte injury.
Most primary MN biopsies exhibit strong IgG4 and C3 staining by immunofluorescence, with minimal C 1 q ,
Table 3| Key questions and research needs regarding complement involvement in kidney disease (top priorities are highlighted in bold)
Condition Important knowledge gaps and key questions Potential research and translation strategies
Diabetic nephropathy
– The role of hyperglycemia in complement activation
– The relationship between complement activation products and disease severity/outcomes
– Outcome data on complement therapies in patients with diabetic nephropathy or FSGS
– Basket or platform clinical studies in diabetic nephropathy and FSGS for patients who rapidly progress despite maximal guideline therapy
– With comprehensive specimen banking
– Focused analysis of complement pathway genes and disease
FSGS
– Better characterization of disease heterogeneity and subgroups
– The relationship between complement-related biomarkers and disease progression
– Mining of existing comprehensive-omics studies of tissue samples, transcriptome, epigenome, proteome, metabolome, “complementome” (complement-relatedomics)
Lupus – Whether the measurement of complement activation products in plasma, tissue, and urine can inform therapy
– Define the role of eculizumab in lupus-associated TMA and in class V LN
– Clarify the contribution of the lectin complement pathway to lupus pathogenesis
– Develop urinary biomarkers of remission of glomerular inflammation
APS – Clinical tools for complement activation assessment
– Trial of patients treated with C5 inhibition for vascular and obstetric forms of APS
– Consider using long-term complement blocking therapies (C5 inhibition) for patients with high risk of thrombotic recurrence such as triple-positive patients (patients with positive serum IgG aPL antibodies and positive functional plasma lupus anticoagulant test result), who are at increased risk for thrombosis despite good anticoagulation
– Trials of short-term therapy for high-risk situations such as vascular injury
AAV
– Whether complement biomarkers can be used to:
– Identify patients likely to benefit from therapy
– Identify nonresponders
– Guide dose and duration of treatment
– The role of complement-directed therapy in severe kidney disease, ANCA-negative pauci-immune GN, extrarenal manifestations, and granulomatous airway disease
– The optimum duration of therapy and role in maintenance therapy (alone or in combination with other agents)
– The role of C5aR in induction of autoimmunity
– Whether C5aR2 inhibition or deletion exacerbates disease in animal models; clinical studies ongoing (InflaRx: NCT03712345)
– The relative risks and benefits of targeting other complement components (no effect of C5b-9 inhibition in animal models )
– Whether C5aR1 blockade or other complement-directed therapies attenuate thrombotic or cardiovascular risk in AAV
– Use clinical trial data and biosamples to evaluate kidney histopathology and longitudinal complement biomarkers in predicting treatment response, in particular plasma C5a levels in patients treated with avacopan
– Post-authorization surveillance studies of long-term safety, relapse risk, and kidney disease progression
– RCT and observational outcome studies (with biomarker analysis) evaluating specific disease manifestations when eGFR is per
IgAN, IgAVN
– Whether the role or contribution of complement is the same in:
– adults and children
– people of various ethnicity or ancestry
– glomeruli and tubulointerstitium
– throughout the lifetime of disease
MN
– Identify the best complement biomarker to assess ongoing complement activation in MN
– Whether there is an adjunctive role for complement inhibition in addition to B-cell depletion therapies
– Identify noninvasive (plasma, urine) complement biomarkers of ongoing complement activation within the glomerulus
– Elucidate the dominant mechanisms of complementmediated podocyte and other kidney cell injury (e.g., tubular cell) during the natural history of the disease, including following the disappearance of circulating autoantibodies
– Evaluate the optimal time to institute complement therapy in the natural history of MN and in relation to the presence/level of circulating autoantibodies
Table 3| (Continued)
Condition Important knowledge gaps and key questions Potential research and translation strategies
– Explore whether there are autoantibodies to complement regulators that exacerbate complement-mediated injury in the kidney in some or all patients with MN
– Measure the impact of complement inhibition on autoantibody levels and vice versa in primary MN
Complementmediated forms of HUS
– The terminology and spectrum of entities that should be considered as complement-mediated kidney TMA
– Whether there is a benefit of C5 inhibition in HUS distinct from primary complement-mediated kidney TMA/HUS
– A reliable and easily implemented diagnostic test for atypical HUS
– Assess the role of inhibitors targeting the alternative C3 convertase in the treatment of complement-mediated HUS
– The role of noncomplement mechanisms of endothelial cell injury in complement-mediated TMA
– The relevance of high-titer anti-factor H autoantibodies in patients with no clinical signs of TMA
– The role of complement inhibition in STEC-HUS
– Assess the exact implication of complement (potentially as a second hit) in secondary TMAs
– Identify biomarkers with validated negative and/or positive predictive value for diagnosis, treatment monitoring, and/or assessment of relapse after treatment discontinuation
– Design and conduct prospective clinical trials with complement inhibitors in secondary kidney TMA
– Standardize anti-factor H antibody tests
– Assess the long-term outcome of repeated recurrences of atypical HUS
– Identify additional predictive factors of relapse after discontinuation of treatment
IC-MPGN and C3G
– Histopathological classification: does the distinction between C3G and IC-MPGN make pathophysiological sense, given that the underlying causes are identical in primary forms?
– Better characterization of disease heterogeneity and subgroups
– The role of C3NeFs in disease causation
– The role of immunosuppression in C3G, especially in comparison with complement inhibition
– Standardized nomenclature for rare non-Mendelian genetic variants
– The utility of identifying anti-C3b, anti-FB, and anti-FH autoantibodies for diagnosis and treatment
– Use an (adaptive) platform clinical trial to assess efficacy and safety of new complement inhibitors
– Explore strategies to identify groups of patients with homogeneous etiology
– Simplify and standardize C3NeF and C5NeF assays
– Explore the prognostic significance of clinical, histologic, and biomarker data to predict outcome and to use as surrogate endpoints
– Conduct functional assays to assess the effect of potentially damaging genetic variants
– Quantify disease risk effects of genetic variants/C3NeFs/ other autoantibodies
AAV, antineutrophil cytoplasmic antibody (ANCA)-associated vasculitis; aPL, antiphospholipid; APS, antiphospholipid antibody syndrome; C3G, complement component 3 glomerulopathy; C5aR, C5a receptor; C5b-9, membrane attack complex; eGFR, estimated glomerular filtration rate; FB, factor B; FH, factor H; FSGS, focal segmental glomerulosclerosis; HUS, hemolytic uremic syndrome; IC-MPGN, immune-complex membranoproliferative glomerulonephritis; IgAN, IgA nephropathy; IgAVN, IgA-associated vasculitis with nephritis; LN, lupus nephritis; MN, membranous nephropathy; NeF, nephritic factor; RCT, randomized controlled trial; STEC, Shiga toxin-producing Escherichia coli; TMA, thrombotic microangiopathy.
suggesting similar pathways of complement activation in the various disease subtypes (although 1 subtype of primary MN associated with autoantibodies to protocadherin-7 appears to exhibit minimal C3 staining ). When evidence of classical pathway activation is present on biopsy (significant C1q, often with a predominance of non-IgG4 subclasses of IgG), a secondary etiology should be considered (e.g., systemic autoimmune disease, infection, malignancy, or exposures). However, a study has very recently shown that, while C 1 q is indeed minimal on routine immunofluorescence of MN biopsy tissue, it can become readily detectable when formalin-fixed tissue undergoes antigen retrieval, unmasking C1q. This finding, suggesting that classical pathway activation may be more common in MN than previously assumed, needs further study.

Clinical implications

Current evidence clearly implicates the alternative, lectin, and perhaps also classical pathways of complement in driving primary MN, but no complement biomarkers have been validated. Phase II clinical trials are evaluating complement
C3, alternative pathway, and lectin pathway inhibition in MN (see Table 1). In primary MN, targeting the lectin and alternative pathways may be appropriate, whereas the inhibition of the classical pathway may be useful in managing secondary forms of MN. A recent observation of recurring primary MN in a patient receiving eculizumab for complement factor Ideficient aHUS suggests that targeting the terminal pathway may not have significant effectiveness.

SYSTEMIC LUPUS ERYTHEMATOSUS (SLE)

In SLE, multiple effector mechanisms cause glomerular inflammation. Based on animal model data, immune complexes mediate glomerular inflammation through Fc receptor engagement and activation of the classical and terminal pathways, although it is the alternative pathway that drives much of the kidney damage. Complement activation is also associated with extrarenal manifestations. Paradoxically, congenital complement deficiencies, mainly of C 1 q and C4, may lead to the development of SLE. Explaining this association in terms of abnormalities in the classical pathway is problematic, as C3 deficiency does not predispose
to SLE. However, Clq does modulate the mitochondrial metabolism of CD8+ T cells, thereby blunting the response to self-antigens. This link between Clq and -cell metabolism may explain how C 1 q protects against lupus and has implications for the role of viral infections in the perpetuation of autoimmunity. Low circulating complement levels (C3 and C4) due to extensive complement activation are associated with disease activity and are included in common disease activity scores. In addition, plasma complement split products and cell-bound complement activation products, namely, erythrocyte-bound C4d and cell-bound , are being investigated as promising biomarkers of disease activity and of specific manifestations of SLE.

Clinical implications

Low circulating C3 and C4 levels predict response to belimumab, and their early normalization has been associated with renal response in trial settings, for example, the Aspreva Lupus Management Study. Measuring anti-C1q antibody titers is valuable in the diagnosis of hypocomplementemic urticarial vasculitis syndrome. There are case reports of using eculizumab in lupus nephritis and in thrombotic microangiopathy (TMA) secondary to lupus. Complicating the interpretation of these case reports, however, is a common polymorphism in C5, Val802Ile (rs17611; 9-121006922-C-T [GRCh38]), that makes C5 Val802 more sensitive to cleavage by neutrophil elastase and other proteases typically not implicated in complement activity. The result is the generation of functional C5a-like fragments that drive inflammation. Importantly, this off-target cleavage of C5 by elastase is not inhibited by eculizumab. A clinical trial of ravulizumab (a monoclonal anti-C5 antibody) is ongoing (NCT04564339).
There are many reports assessing complement activation fragments as clinical biomarkers in SLE. However, these assays are not routinely available and require careful sample handling to avoid spurious results due to ex vivo complement activation. It is also not clear what extra value they would add to widely available serological markers of disease activity (double-stranded DNA antibody titer, C3 and C4 levels). Some complement assays may have clinical utility when using complement inhibitors. For example, the optimal use of eculizumab/ravulizumab may be aided by the ability to determine if full inhibition of C 5 activation in plasma has been achieved (e.g., through C5 activation assays) and whether there is evidence of C 5 inhibition in the kidney biopsy (e.g., by staining for C5b-9 and quantifying inflammatory cells). Meeting participants had reservations about C3 inhibition in SLE due to the role of C3 in the physiological removal of immune complexes and about inhibition of the classical pathway due to the strong association between complete deficiency of classical pathway proteins and lupuslike syndromes. Adverse interactions between complement inhibitors and existing standard-of-care treatment for lupus, including B-cell depletion with anti-CD20 antibodies, would not be expected.

ANTIPHOSPHOLIPID ANTIBODY SYNDROME (APS)

Complement is implicated in the pathogenesis of the 3 forms of primary APS (vascular, obstetric, and catastrophic). Deposition of complement has been reported in vessel walls, and there is evidence of classical pathway activation in primary APS, which occurs even in quiescent APS (i.e., far from the thrombotic event). There is no clear evidence of a relationship between plasma complement and vascular manifestations. However, one small study showed that persistently high plasma C 5 a and sC5b-9 levels during quiescent APS are associated with higher risk of vascular recurrence and may identify patients who might benefit from complement inhibition. Notably, in obstetric APS, a multicenter registry showed that low preconception C3 and C4 levels were associated with adverse pregnancy outcomes, and another multicenter study showed that increased Bb and sC5b-9 levels in early pregnancy strongly predicted adverse pregnancy outcomes. Eculizumab has been used in catastrophic APS, with reports of improvement in some cases. The evidence of efficacy is difficult to evaluate as eculizumab is used with concomitant therapies, such as intravenous immunoglobulin, plasma exchange, or cyclophosphamide. Eculizumab has also been used to prevent rethrombosis after surgery in APS.

Clinical implications

In catastrophic APS, the use of complement inhibitors may be a suitable therapeutic option, and eculizumab is listed as a treatment option in European Alliance of Associations for Rheumatology guideline recommendations. Complement blockade will increase infection risk, and because infections are considered to trigger vascular events in APS, antibiotic prophylaxis may be prudent. Clinical trials of anticomplement therapy in the 3 forms of APS are highly challenging and would need an innovative design to achieve robust conclusions. There is no evidence that complement inhibition would interfere with the mechanism of action of anticoagulant therapies, which are the mainstay of APS management.

ANCA-ASSOCIATED VASCULITIS

Previously described in vitro, in vivo, and clinical evidence implicate complement activation in the development of AAV and AAV-glomerulonephritis. In summary, there is evidence of alternative and terminal pathway activation in AAV with glomerular staining for FB, properdin, membrane attack complex, and C3d and elevated plasma levels of C3a, C5a, and Bb in active disease. In a mouse model of anti-mye-loperoxidase-associated glomerulonephritis, either FB or C5 deficiency prevented disease, whereas C4 deficiency had no discernable effect. These outcomes indicate that the alternative and terminal pathways, but not the classical and lectin pathways, are required for disease induction. Further studies in a mouse model of anti-myeloperoxidase-associated AAV showed that, while glomerulonephritis was prevented by either C5a receptor deficiency or blockade of a humanized C5a receptor with avacopan, C6 deficiency had no effect. This result indicates that the production of C 5 a and its
interaction with the C 5 a receptor and not the membrane attack complex is driving the glomerulonephritis. In vitro studies have shown that activation of primed (i.e., tumor necrosis factor- treated) neutrophils with ANCA (either myeloperoxidase or proteinase 3) resulted in C 5 a generation. C5a, in turn, primed neutrophils for subsequent ANCA-induced activation in a C 5 a receptor-dependent manner. Taken in aggregate, these data provided the rationale for investigating the efficacy of C5a-C5a receptor blockade in AAV.

Clinical implications

Clinical trial data support the use of avacopan (C5aR1 blockade) as a steroid-sparing therapy in AAV/AAVglomerulonephritis (granulomatosis with polyangiitis and microscopic polyangiitis; Supplementary Table S1). Treatment is well tolerated and enables glucocorticoid withdrawal, a major benefit to patients. Some evidence suggests that avacopan treatment improves recovery of estimated glomerular filtration rate (eGFR) and albuminuria level, although further confirmation is required. It is also unclear if blockade of C5aR1 (or other complementdirected therapy) attenuates thrombotic or cardiovascular risk. Key considerations are the optimum duration of therapy and its role in maintenance (alone or in combination with other agents), as well as the role of C5aR in induction of autoimmunity. Presently, avacopan is used in combination with a rituximab or cyclophosphamide regimen for treating adult patients with severe disease, and studies are needed to determine optimal patient groups and disease stages. Clinical studies of C5a blockade using an anti-C5a antibody (vilobelimab) are in progress (InflaRx: NCT03712345; Table 1). The utility of complement biomarkers to predict response to treatment or guide dose or duration of treatment is unclear. Also unclear is the role of complement-directed therapy in severe kidney disease, ANCA-negative pauci-immune GN, extrarenal manifestations, and granulomatous airway disease.

TMAs, COMPLEMENT-MEDIATED FORMS OF HUS Terminology

The current terminology of atypical, primary, and secondary HUS needs updating because it is confusing and does not reflect pathogenesis. The National Kidney Foundation has recently reviewed the spectrum of conditions associated with TMA and proposed a diagnostic approach that should ideally reflect the underlying pathogenic mechanisms, the role of complement and other potential triggers, and responsiveness to complement blockade. Novel terminologies should not negatively impact access to or reimbursement for complement inhibitors.

Complement involvement and associated pathogenicity

Current evidence strongly supports alternative and terminal pathway dysregulation driving most forms of aHUS. Beyond complement dysregulation, many other causes,
including deficiencies in diacylglycerol kinase-ɛ (DGKe), cobalamin-C deficiency, interferon administration, and vascular endothelial growth factor inhibition, have mechanistic roles in driving a kidney TMA phenotype. TMAs mediated by DGKe and MMACHC (methylmalonic aciduria [cobalamin deficiency] cblC type, with homocystinuria) are nonresponsive to C5 inhibition. It is not known whether interferon- and vascular endothelial growth factor inhibition-mediated TMAs respond to C5 inhibition.
Biomarkers (complement levels and functional assays; Supplementary Table S3), detection of anti-factor H (FH) autoantibodies, and complement genetics may help distinguish transient versus permanent complement activation/ dysregulation in specific settings. Complement activation may be self-resolving. Constitutive AP dysregulation is not synonymous with permanent activation requiring continuous treatment. Complement activation may be a TMA-causing event, an amplifying factor, or a by-product. It is unclear if this distinction will be helpful for TMA/HUS reclassification. However, it may be helpful for the long-term management of patients, particularly in determining the duration of complement inhibition.

Biomarkers

The report from the 2015 Controversies Conference highlighted the need of specific biomarkers that could help diagnose and monitor complement-mediated forms of HUS (TMA). To date, there is no universally available diagnostic biomarker for aHUS. Clinical diagnosis relies on the exclusion of other conditions. However, an autoimmune form of complement-mediated TMA can be identified in the acute phase by the presence of anticomplement FH autoantibodies. Importantly, complement biomarkers are helpful in the identification of the etiological factor involved (Supplementary Table S3).
To date, no biomarker with the ability to identify complement AP dysregulation in the setting of HUS has been validated for clinical use in patient management and selection of candidates for C 5 blockade at disease onset. A normal blood complement profile does not exclude a complementmediated HUS. However, biomarkers/tests are helpful to monitor complement inhibition and relapse risk (e.g., complement total blood test [CH50], free C5, sC5b-9, antiFH autoantibodies). In routine practice, only CH 50 and eculizumab trough levels are used to assess the degree of terminal complement blockade. Newly developed assays, such as ex vivo cell-based tests (human dermal microvascular endothelial cells-1 assay and modified Ham test), have been proposed to diagnose and monitor complement-mediated forms of TMA. These assays require further validation before implementation in the clinic. Moreover, a pressing issue remains obtaining uniform and comparable dosing of anti-FH autoantibodies, which currently is difficult to harmonize and reproduce between different laboratories.

Genetics

Genetics and autoantibody screening in patients with suspected complement-mediated HUS are listed in Supplementary Table S4. Complement genetic findings (common and rare variants, copy number variations, etc.) should be interpreted by a laboratory with expertise in complement-related diseases. The term variant should be used instead of mutation, with identified variants classified as pathogenic/likely pathogenic, of uncertain significance, or benign/likely benign (Supplementary Table S5). Atypical HUS has a variable (low) penetrance, and rare variants in complement genes are only predisposing factors for the disease. The risk of developing disease increases with the number of genetic risk factors and is modulated by the (complement factor H ) and (membrane cofactor protein) risk haplotypes.
Genetic analysis can stratify the risk for aHUS relapse/ recurrence after treatment discontinuation and kidney transplantation (Supplementary Figure S1). In the 2015 Conference report, related kidney donors were to be considered only if donors were free of any causative genetic (or acquired) factors identified in the recipient. The absence of pathogenic complement gene variants in the index case and the potential kidney donor is not a contraindication to kidney donation. In addition, donor or aHUS risk haplotypes are not contraindications to donation. Healthy carriers of complement pathogenic variants are at risk of developing aHUS after kidney donation. Genetic analysis can stratify the risk of disease development in such donors.
C5 polymorphisms may explain resistance to inhibition with eculizumab and ravulizumab, but these are very rare and mainly restricted to Asian populations. The detection of anti-FH autoantibodies impacts the initial management of aHUS (combination of plasma exchange and/or complement inhibitor and/or immunosuppressive drugs). The evolution of anti-FH autoantibodies can stratify the risk of disease relapse/ recurrence after treatment discontinuation or kidney transplantation. The management of patients with a persistently high titer of anti-FH autoantibodies and no clinical manifestations of TMA remains controversial.

Treatment

Currently available. C5 inhibition, when available, is the gold standard treatment for complement-mediated forms of aHUS. Timing of therapy with the prompt use of C5 blockade is crucial for short- and long-term outcomes; however, establishing the diagnosis remains challenging, and treatment should be started without waiting for results of genetic screening. In countries where access to complement inhibitors is lacking, prompt prescription of plasma exchange should be considered. In most centers, anti-C5 drugs are used as prophylaxis in patients at high risk of recurrence after kidney transplantation. However, alternative strategies can be considered, including living donation in combination with a protocol to reduce endothelial injury
or combined liver-kidney transplant. Of note, pregnancy/ postpartum-HUS, which is a diagnosis of exclusion, is deemed to be within the spectrum of complement-mediated kidney TMA, and as such, it should be treated with C5 blockade.
Emerging. For the acute and/or remission phase, various C5 inhibitors are available or in development, including antibodies, small, interfering RNA, and short- and long-acting drugs with multiple modes of administration. Targeting the alternative pathway at the level of C3 activation/FB/factor D inhibition is a potential alternative (Table 1; Figure 3). Overall, due to the disease severity, the use of any emerging agents should be primarily limited to maintenance of remission until their noninferiority to eculizumab is clearly established in the acute phase. Existing data (Supplementary Table S1) demonstrate the efficacy of ravulizumab at onset and in the maintenance phase, particularly in children ; in adults, results have been less clear, possibly because the populations studied may have included patients who did not have primary aHUS. However, in the acute phase, before a diagnosis of complement-mediated aHUS is established, the use of long-acting complement blockade (ie, ravulizumab and crovalimab) raises concern.
Discontinuation of therapy. Once kidney function has improved and stabilized, discontinuation should be considered in patients without pathogenic variants in complement genes. The risk of relapse after discontinuation in these patients is very low, Discontinuation in patients with pathogenic complement gene variants and those with persistently high-titer anti-FH autoantibodies should be determined on a case-by-case basis, in a shared-decision process. Extreme caution in stopping is warranted in patients with chronic kidney disease stages G3b-G5 and in kidney transplant recipients. Discontinuation requires close monitoring (monthly blood tests and weekly urinary dipsticks) and early treatment restart in the event of relapse. In patients requiring long-term C5 inhibition, regimens can be individualized if optimal complement blockade is maintained ( ). The utility of drug trough level measurement is debatable.
C5 inhibition is ineffective in patients with DGKe variants or cyanocobalamin C deficiency in the absence of complement variants. There is also no proof that complement inhibition is beneficial in moderate or severe forms of Shiga toxin-producing Escherichia coli-associated (STEC)-HUS, although some in vitro and ex/in vivo data document complement activated in STEC-HUS. Some case reports have claimed improvement of severe STEC-HUS after C5 blockade; however, it should be noted that STEC-HUS is a self-limiting condition in most cases. The ECULISHU trial (Eculizumab in STEC-HUS; ClinicalTrials.gov NCT02205541), a randomized controlled study in which 100 pediatric patients were assigned to eculizumab or placebo, failed to show a benefit of eculizumab in the acute phase (see Supplementary Table S1). Moreover, concerns regarding hepatic toxicity of eculizumab in STECHUS have been raised. Results of the ECUSTEC
(Eculizumab in STEC; EudraCT 2016-000997-39) randomized trial are anticipated.
Complement inhibition in other forms of HUS. Enrichment of complement pathogenic variants in other forms of TMA has not been proven. Retrospective data have yielded discrepant results regarding the benefit from short-term C5 blockade. Prospective controlled trials are in progress. After hematopoietic stem cell transplant, TMA is difficult to diagnose given the multiple potential causes of low platelet count, acute kidney injury, or anemia/hemolysis. Similarly, a differential diagnosis of de novo HUS post-kidney transplantation is difficult. In the absence of an alternative cause, including antibody-mediated rejection, treatment with a C5 blocker is to be started and re-evaluated based on complement genetic results and clinical response. In other forms of secondary TMA, there is no definite proof of benefit from C5 inhibition.

C3 GLOMERULOPATHY AND IMMUNE-COMPLEX MEMBRANOPROLIFERATIVE GLOMERULONEPHRITIS Histology

C3G. C3G typically appears as a membranoproliferative pattern, although mesangial, endocapillary proliferative, crescentic, and sclerosing patterns may be present with light microscopy. With immunofluorescence microscopy, C3 is dominant and Clq is typically negative.
IC-MPGN. IC-MPGN is characterized by the deposition of immune complexes containing both polyclonal immunoglobulins and complement. This lesion classically results from chronic antigenemia with or without circulating immune complexes and is usually due to infections or autoimmunity. IC-MPGN can be identical to C3G with light microscopy; however, on immunofluorescence, C3 staining is co-present with IgG and with , and IgM at varying intensities. Identifying the driving antigen can be challenging and requires a thorough clinical history with review of antecedent exposures and comorbidities (mainly infection). In adults, infections, autoimmune disease, and monoclonal immunoglobulin are responsible for most cases of IC-MPGN.
True primary immunoglobulin-associated MPGN is rare in adults. It is more prevalent in children and often associated with genetic and/or serologic evidence of dysregulation of the alternative pathway. IC-MPGN may evolve to C3G, and in such cases, an infection is the most frequent disease trigger.

Genetic testing

The genetics of C3G and IC-MPGN are complex and, in the opinion of most participants, should be evaluated in all patients with paraprotein-negative C3G and primary ICMPGN. Studies suggest that rare variants (minor allele frequency ), most frequently in , or , will be found in approximately of patients, often with a corresponding quantitative complement protein
deficiency. The presence of a rare variant is associated with poor kidney survival.
Familial C3G is rare and has been linked to (i) dominantly inherited gain-of-function genomic rearrangements that generate CFH -related ( CFHR ) fusion genes with duplication of the N-terminal dimerization domains such as classic CFHR5 nephropathy (endemic in Cyprus; CFHR5/5), although other examples include , CFHR5/2, and CFHR1 fusions ; (ii) dominantly inherited C3 gain-of-function variants in single families such as c.2768_2773delACGGTG, p.(Asp923_Gly924del); c. , p.(Ile756Thr); and c.2390A>T, p.(Asp797Val), which lie in a mutational hotspot area ; and (iii) recessively inherited biallelic variants, which have been described with dense deposit disease and C3G glomerulonephritis presenting early in life. Genetic counseling for these families is complex and nuanced, and segregation analysis must include comprehensive genetic and complement biomarker testing. Risk for disease cannot be determined by only following allele segregation as illustrated by single truncating/missense variants in genes such as , and , in which the observed phenotype is dependent on the underlying genetic complement background and the circulating levels of complement proteins. This complexity means not only that penetrance is highly variable but also that the observed phenotype can be C3G/IC-MPGN, aHUS, or another related disease, significantly complicating variant interpretation and genotype-phenotype association studies.
Identifying non-monogenic genetic risk factors for C3G and IC-MPGN. Common variants in HLA (human leukocyte antigen), C3, CFH, and CD46 (MCP) alter risk of C3G and ICMPGN but have only modest effects (odds ratio: ). This effect is not clinically actionable if the individual carries no other genetic variants; however, if a pathogenic variant is present, common variants that modify risk may impact penetrance and inform genetic counseling in these families. International collaborations are recommended to study the genetics of C3G, with controls for variant ascertainment and ancestry, complemented with robust functional characterization of identified variants.

Serologic testing

Nephritic factors ( NeFs ) are present in of patients and constitute a heterogeneous group of autoantibodies that stabilize either or both C 3 convertase and C 5 convertase complexes. They are distinct from anti-FB and anti-C3 autoantibodies in that NeFs bind convertases but not the native proteins from which convertases are derived. The most specific and sensitive assays quantitate NeF activity by complement-driven hemolysis of sheep erythrocytes (Supplementary Table S6).
The presence of NeFs is typically associated with a reduction in circulating C3 and an increase in complement activation products. High activity correlates
with low C 3 levels ( C 3 NeF and C 5 NeF ) and high sC5b-9 levels ( C 5 NeF ). C 3 NeF is more prevalent in dense deposit disease, and C 5 NeF is more prevalent in C 3 G glomerulonephritis and IC-MPGN. Detection of NeFs indicates an autoimmune process, can define the site of complement dysregulation, and may suggest responsiveness to treatments inhibiting the complement cascade at different levels. C4NeFs are occasionally identified in C3G and IC-MPGN, have a similar effect as and are believed to activate the convertases of the classical and lectin pathways (C4b2a and C4b2aC3b).
NeF screening should be accompanied by complement biomarker profiling to determine the degree of co-occurring complement dysregulation (Supplementary Table S6). The role of cluster analysis in revealing the impact of C 3 NeFs and C5NeFs on diagnosis and clarifying disease etiology is promising but needs validation. Testing for anti-FB autoantibodies is useful, as transient high titers of these antibodies have been associated with post-infectious glomerulonephritis.
No commercial NeF assays are available, and testing is performed in specialized laboratories. Many of these laboratories work actively with the International Union of Immunological Societies Committee for the Standardization and Quality Assessment of Complement Measurements to crossvalidate complement assays and ensure rigor and reproducibility in testing results. Common reference lab protocols need to be validated and disseminated for serologic testing of autoantibodies to FH , NeFs, and individual complement components and their breakdown products. Correlation of complement measurements with clinical outcomes is important to allow the assessment of drug efficacy in the future.

Monoclonal gammopathies

All adults over age 50 years presenting with C3G/IC-MPGN should be screened for monoclonal gammopathy. The chance of a monoclonal band being incidental to C 3 G is small in those years of age (in clinical experience, the youngest case of monoclonal gammopathy-C3G has been a 17 -year-old). To improve kidney outcomes, when a paraprotein is identified, treatment should be directed at the underlying hematological disease. Anecdotally, a short course of eculizumab used in combination with hematological treatment has shown favorable results in patients with monoclonal gammopathy-driven C3G. Trial data would be needed to assess whether complement inhibition with or without clone-directed therapy is better than treatment of hematological disease alone.

Treatment

The natural histories of C3G and IC-MPGN are incompletely understood, making it difficult to define the prognostic value of early parameters of disease. There is evidence, however, that biopsy features, proteinuria, and kidney function are important prognostic markers. In addition, circulating complement biomarkers in plasma may be of prognostic
significance because most cases show complement activation in fluid phase.
In C3G, the frequency and functional effect of NeFs as well as the presence of variants in complement genes associated with deposition of C3 in the glomerulus strongly implicate activation of the alternative pathway of complement as playing a central, early role in disease pathophysiology. For autoimmune (C3NeF)-driven C3G, therapies targeting the autoantibody have not proven effective, suggesting that even small amounts of NeF may be sufficient to drive disease and that complete elimination is unachievable with currently available immunosuppressive strategies. Therapy targeting the alternative pathway is an attractive approach in this disease and may address a significant unmet medical need.
Specific supportive therapies are beneficial. For mild cases (e.g., proteinuria with no tendency to increase in adults, in children, stable eGFR), general renoprotective therapies (renin-angiotensin-aldosterone system blockade as the initial antiproteinuric and antihypertensive measure) and low-sodium diet should be advised. In a retrospective observational study, the use of renin-angiotensin-aldosterone system blockers was associated with better kidney survival. It has been reported that renin is able to cleave but this claim has been refuted and should not inform treatment. Evidence for using sodiumglucose cotransporter 2 inhibitors is lacking, but data from other glomerular diseases suggest a possible benefit, especially in adults with C3G/IC-MPGN and chronic kidney disease.
For patients with proteinuria (children ) despite receiving optimized supportive therapy, treatment with mycophenolate mofetil or mycophenolic acid analogs (combined with corticosteroids) is considered reasonable, especially with albuminuria increases over time and severe activity lesions in kidney biopsy. Although the mechanism of action is not known, mycophenolate mofetil likely decreases glomerular inflammation rather than inhibiting C3NeF activity. As baseline proteinuria increases, the probability of an effect with mycophenolate mofetil decreases. Relapse after discontinuation of treatment is frequent, although less likely with longer treatments. In retrospective observational studies, mycophenolate mofetil has shown a greater capacity to induce remissions than other immunosuppressive regimens, although remarkable discrepancies have been reported between series. Some benefit from the use of calcineurin inhibitors has also been reported. Currently, oral immunosuppressive agents are the mainstay of treatment for more severe forms of C3G and IC-MPGN given the lack of proven alternatives.
Terminal complement inhibition/plasma therapy. Case reports and case series suggest that crescentic, rapidly progressive disease or the presence of TMA lesions (occasionally but not always with high circulating sC5b-9 levels) is most likely to be responsive to eculizumab. A very rapid, substantial, and sustained improvement has been reported
with eculizumab in some patients with these severe presentations; however, access to eculizumab is very limited in most countries. In addition, the rarity and speed of kidney function loss in these patients mean they are poorly represented in clinical trials, so case series data are unlikely to be forthcoming soon. The efficacy of eculizumab in slowly progressive forms of C3G seems limited. Short-term benefits of plasma infusion or plasma exchange for refractory cases with an FH deficiency have been demonstrated, but evidence of long-term benefit is lacking. Plasma-based treatment can be very arduous, and sensitization is a risk.
Complement alternative pathway inhibition might offer benefit to patients in whom clinical, biochemical, or histologic features suggest high risk of poor outcomes, such as those with high activity score, low chronicity index, proteinuria, nephrotic syndrome, or eGFR decline. Phase 2 and preliminary phase 3 study results with avacopan (a C5aR antagonist), iptacopan (an FB inhibitor), and pegcetacoplan (a C3 inhibitor) indicate important shortterm proteinuria reduction and stabilization of kidney function (Supplementary Table S1). Mechanistic data on the effect of these treatments in disease situations are lacking. Making trial biomarker data public would be beneficial for tailoring trial designs.
The evidence supporting complement inhibition is more limited in IC-MPGN. Some cases of IC-MPGN behave similarly to C3G, and some patients switch from IC-MPGN to C3G. Consistent with this observation, there is overlap in common genetic variant risk factors and some serological markers. If underlying infectious, autoimmune, or monoclonal disease is ruled out, it is reasonable to treat IC-MPGN similarly to C3G. However, data on IC-MPGN patients treated with complement inhibitors are sparse (the EAGLE trial [Eculizumab in Primary MPGN] did include patients with IC-MPGN), though recent trials will provide results soon (see Table 1). To retrospectively analyze the effects of different treatments, large cohorts with well-defined diagnostic criteria are needed, as well as inclusion of ICMPGN cases in prospective studies with new complement inhibitors.
Endpoints. Proposed endpoints to assess treatment efficacy are a decrease in proteinuria and stabilization or improvement of eGFR. Long-term natural history data are needed to determine how to define successful control of proteinuria. Given the young age of disease onset, some patients may need kidney function for 80-plus years from disease onset. Histology, eGFR, eGFR slope, kidney failure, edema, nephrotic syndrome, and hematuria remission are factors to consider. Complement biomarkers (C3 levels, C3NeF activity, and biomarkers of alternative pathway activation) may be helpful in monitoring the effectiveness of complement inhibition, but better data are required to correlate systemic complement activity with clinical outcomes. Patients in attendance expressed the view that repeat
biopsies are not necessarily unacceptable for participation in trials.
With the exception of data suggesting benefit of terminal pathway blockade in select cases, there are currently insufficient data to tailor the selection of a specific complement inhibitor based on serological, genetic, and biomarker workup of patients with C3G and IC-MPGN.

CONCLUSIONS AND FUTURE DIRECTIONS

Numerous lines of evidence show that activation or dysregulation of complement plays some role in the pathogenesis of a growing array of kidney diseases. Although in aHUS and C3G/ IC-MPGN alternative pathway dysregulation appears to be the main driver of disease, in other conditions, complement may play a more nuanced role, for example, perpetuating glomerular injury after immune complex deposition, as in MN, or contributing to chronic damage, as in diabetic kidney disease or FSGS. As a growing number of therapeutic agents targeting different parts of the complement cascade become available, understanding how and when to use them requires a vast improvement in our capacity to pinpoint the relevant complement pathway or protein involved in each patient and characterize its role (central or marginal) and its phase (acute or chronic). Table 2 highlights the concerns and needs of the patient population that should be honored and addressed. Supplementary Table S2 summarizes the group consensus on where we are for all the kidney diseases described based on currently available research, whereas Table 3 explicitly defines research priorities likely to improve our understanding of complement dysregulation in kidney diseases and to improve patient care. Crucially, biomarker studies are needed to identify disease-specific panels of biomarkers that can facilitate the diagnosis, treatment monitoring, and/or assessment of different glomerular diseases.
Given that these kidney diseases are mostly rare and heterogeneous, significant progress can be made only through concerted, multinational efforts to identify biomarkers of complement activation/dysregulation, standardize their measurement, and promote their global implementation. The clinical trials aimed at evaluating complement inhibitors in kidney diseases need to prospectively collect serum, whole blood, urine, and kidney biopsy tissue to validate existing and future diagnostic and prognostic tools. Dissemination of data on complement biomarkers in the tissue, plasma, and urine should be required in these studies. The limited biomarker data already available are listed in Supplementary Table S3. All relevant stakeholders (patient and caregiver associations, medical societies, national and international health authorities, and pharmaceutical companies) need to synergize to promote registries, biobanks, data sharing, and open access to trial results to allow our understanding and our resources to evolve to the point where we can fingerprint individual patients and offer them early, accurate diagnosis and safe, effective, and affordable treatment.

APPENDIX

Additional Conference Participants

Federico Alberici, Italy; Luca Antonucci, Italy; Tadej Avčin, Slovenia; Arvind Bagga, India; Ingeborg M. Bajema, the Netherlands; Miquel Blasco, Spain; Sophie Chauvet, France; H. Terence Cook, UK; Paolo Cravedi, USA; Marie-Agnès Dragon-Durey, France; Lauren Fischer, USA; Agnes B. Fogo, USA; Ashley Frazer-Abel, USA; Véronique Frémeaux-Bacchi, France; Nina Goerlich, Germany; Mark Haas, USA; Alister Humphreys, UK; Vivekanand Jha, India; Arenn Jauhal, Canada; David Kavanagh, UK; Andreas Kronbichler, UK; Richard A. Lafayette, USA; Lynne D. Lanning, USA; Mathieu Lemaire, Canada; Moglie Le Quintrec, France; Christoph Licht, Canada; Adrian Liew, Singapore; Stephen P. McAdoo, UK; Nicholas R. Medjeral-Thomas, UK; Pier Luigi Meroni, Italy; Johann Morelle, Belgium; Carla M. Nester, USA; Manuel Praga, Spain; Raja Ramachandran, India; Heather N. Reich, Canada; Giuseppe Remuzzi, Italy; Santiago Rodríguez de Córdoba, Spain; Gary Robinson, UK; Pierre Ronco, France; Peter Rossing, Denmark; David J. Salant, USA; Sanjeev Sethi, USA; Marianne Silkjaer Nielsen, Denmark; Wen-chao Song, USA; Fabrizio Spoleti, Italy; Ronald P. Taylor, USA; Nicole C.A.J. van de Kar, the Netherlands; Cees van Kooten, the Netherlands; Len Woodward, UK; Yuzhou Zhang, USA; Peter F. Zipfel, Germany; and Marco Zuccato, United Arab Emirates

DISCLOSURES

KDIGO provided travel and medical writing support to all conference participants. MV discloses participating in sponsored clinical trials and receipt of consulting fees from Alexion, Apellis, Bayer, BioCryst, ChemoCentryx, Chinook Therapeutics, Novartis, Purespring Therapeutics, Roche, and Travere Therapeutics. JB discloses receipt of research funding from Alexion, Argenx, Novartis, and Omeros; consultancy fees from Alexion, Alnylam Pharmaceuticals, Argenx, BioCryst, Kira Pharmaceuticals, Novartis, Omeros, Q32 Bio, and Roche. LHB discloses receipt of consulting fees from CANbridge Pharmaceuticals, Cerium Pharmaceuticals, Novartis, and Travere Therapeutics. LHB is supported in part by National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases (NIDDK) R01 DK 126978. FF discloses receipt of consulting fees paid to his institution from Alexion, Apellis, Novartis, Roche and Sobi, and participation on advisory boards for Alexion, Apellis, Novartis, Roche, and Sobi. DPG discloses receipt of consulting fees from Alexion, Alnylam, and Novartis and serving as chair of the UK Kidney Association Rare Diseases Committee. EGdJ discloses receipt of grants or contracts from the European Union and Ministerio de Ciencia e Innovación; consulting fees paid to her institution from Q32 Bio; speaker honoraria from Alexion and Sobi; and serving as secretary of the European Complement Network and a board member of the European Complement Network. MN discloses receipt of grants or consulting fees from Alexion, BioCryst, ChemoCentryx, Gemini, Novartis, and Sobi. MN has been supported by Fondazione Regionale per la Ricerca Biomedica (Regione Lombardia), project ERAPERMED2020-151, GA 779282. MCP discloses receipt of institutional grants from the Wellcome Senior Fellowship and Omeros; consulting fees from Alexion, Annexon Biosciences, Catalyst Biosciences, Complement Therapeutics, Gemini Therapeutics, Gyroscope Therapeutics, Purespring Therapeutics, and Sobi; payment for expert testimony from Osborne Clarke; and payment for serving as a grant panel review member for Barts Charity. MCP is a Wellcome Senior Fellow in Clinical Science (212252/Z/18/Z). He acknowledges the support from the National Institute for Health Research (NIHR) Biomedical Research Centre based at Imperial College Healthcare National Health Service Trust and Imperial College London and from the NIHR Clinical Research Network. The views expressed are of the
author and not necessarily those of the National Health Service, the NIHR, or the Department of Health. KS discloses receipt of speaking honoraria from GSK, Novo Nordisk, and Pfizer, and institutional grants from AstraZeneca, Boehringer Ingelheim, Genentech, Gilead Sciences, GSK, KKC Corporation, Novartis, and Regeneron Pharmaceuticals. JMT discloses receipt of grants from the U.S. National Institutes of Health Department of Defense; consulting fees from and holding stock interest in Q32 Bio and the potential to receive royalty income from them; speaker honoraria from the U.S. National Kidney Foundation; and participating on advisory boards for BioMarin and Rocket Pharmaceuticals. MJ discloses the following payments to his institution: grants from AstraZeneca; consulting fees from Astellas, AstraZeneca, Bayer, Boehringer Ingelheim, CardioRenal, CSL Vifor, GSK, STADA Eurogenerics, and Vertex Pharmaceuticals; speaker honoraria from AstraZeneca, Bayer, and Boehringer Ingelheim; payment for expert testimony from Astellas and STADA Eurogenerics; and receipt of travel support from AstraZeneca and Boehringer Ingelheim. MJ also discloses serving as volunteer cochair for KDIGO. WCW discloses receipt of grants or contracts from the National Institutes of Health; consulting fees from Akebia, Ardelyx, AstraZeneca, Bayer, Boehringer Ingelheim, GSK, Merck Sharp & Dohme, Natera, Pharmacosmos, Reata Pharmaceuticals, Unicycive, Vera Therapeutics, and Zydus Lifesciences; speaker honoraria from GSK and Pharmacosmos; travel support from KDIGO; participation on data safety monitoring or advisory boards for Akebia/Otsuka, AstraZeneca, Bayer, Boehringer Ingelheim/Lilly, GSK, Merck Sharp & Dohme, Natera, Pharmacosmos, Reata Pharmaceuticals, Vera Therapeutics, and Zydus Lifesciences; and serving as cochair of KDIGO. RJHS discloses directing the Molecular Otolaryngology and Renal Research Laboratories. All the other authors declared no competing interests.

ACKNOWLEDGMENTS

The conference was sponsored by Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO) and was supported in part by unrestricted educational grants from Alexion, Alnylam Pharmaceuticals, Apellis, BioCryst, Calliditas Therapeutics, ChemoCentryx, Chinook Therapeutics, CSL Vifor, Novartis, Omeros, Otsuka, Roche, Sanofi, and Visterra.
The authors thank Debbie Maizels for assistance with illustrations.
Supplementary material is available online at www.kidneyinternational.org.

REFERENCES

  1. Goodship TH, Cook HT, Fakhouri F, et al. Atypical hemolytic uremic syndrome and C3 glomerulopathy: conclusions from a “Kidney Disease: Improving Global Outcomes” (KDIGO) Controversies Conference. Kidney Int. 2017;91:539-551.
  2. Thurman JM. Complement and the kidney: an overview. Adv Chronic Kidney Dis. 2020;27:86-94.
  3. Zipfel PF, Wiech T, Rudnick R, et al. Complement inhibitors in clinical trials for glomerular diseases. Front Immunol. 2019;10:2166.
  4. Dixon BP, Greenbaum LA, Huang L, et al. Clinical safety and efficacy of pegcetacoplan in a Phase 2 study of patients with C3 glomerulopathy and other complement-mediated glomerular diseases. Kidney Int Rep. 2023;8:2284-2293.
  5. Barratt J, Liew A, Yeo SC, et al. Phase 2 trial of cemdisiran in adult patients with IgA nephropathy: a randomized controlled trial. Clin J Am Soc Nephrol. 2024;19:452-462.
  6. Garnier A, Brochard K, Kwon T, et al. Efficacy and safety of eculizumab in pediatric patients affected by Shiga toxin-related hemolytic and uremic syndrome: a randomized, placebo-controlled trial. J Am Soc Nephrol. 2023;34:1561-1573.
  7. Bruchfeld A, Magin H, Nachman P, et al. C5a receptor inhibitor avacopan in immunoglobulin A nephropathy-an open-label pilot study. Clin Kidney J. 2022;15:922-928.
  8. Jayne DRW, Merkel PA, Schall TJ, et al. Avacopan for the treatment of ANCA-associated vasculitis. N Engl J Med. 2021;384:599-609.
    8a. Barbour S, Makris A, Hladunewich MA, et al. An exploratory trial of an investigational RNA therapeutic, IONIS FB-LRx, for treatment of IgA nephropathy: new interim results [ASN Kidney Week 2023 abstract]. J Am Soc Nephrol. 2023;34:988.
  9. Wong E, Nester C, Cavero T, et al. Efficacy and safety of iptacopan in patients with C3 glomerulopathy. Kidney Int Rep. 2023;8:2754-2764.
  10. Zhang H, Rizk DV, Perkovic V, et al. Results of a randomized doubleblind placebo-controlled Phase 2 study propose iptacopan as an alternative complement pathway inhibitor for IgA nephropathy. Kidney Int. 2024;105:189-199.
  11. Nester C, Appel GB, Bomback AS, et al. Clinical outcomes of patients with C3G or IC-MPGN treated with the Factor D inhibitor danicopan: final results from two Phase 2 studies. Am J Nephrol. 2022;53:687700.
  12. Podos SD, Trachtman H, Appel GB, et al. Baseline clinical characteristics and complement biomarkers of patients with C 3 glomerulopathy enrolled in two Phase 2 studies investigating the Factor D inhibitor danicopan. Am J Nephrol. 2022;53:675-686.
  13. Zhang Y, Martin B, Spies MA, et al. Renin and renin blockade have no role in complement activity. Kidney Int. 2024;105:328-337.
  14. Dick J, Gan PY, Ford SL, et al. C5a receptor 1 promotes autoimmunity, neutrophil dysfunction and injury in experimental antimyeloperoxidase glomerulonephritis. Kidney Int. 2018;93:615-625.
  15. Xiao H, Dairaghi DJ, Powers JP, et al. C5a receptor (CD88) blockade protects against MPO-ANCA GN. J Am Soc Nephrol. 2014;25:225231.
  16. Thomas MC, Brownlee M, Susztak K, et al. Diabetic kidney disease. Nat Rev Dis Primers. 2015;1:15018.
  17. Reidy K, Kang HM, Hostetter T, et al. Molecular mechanisms of diabetic kidney disease. J Clin Invest. 2014;124:2333-2340.
  18. Lu Q, Hou Q, Cao K, et al. Complement factor B in high glucose-induced podocyte injury and diabetic kidney disease. JCI Insight. 2021;6: e147716.
  19. Li L, Wei T, Liu S, et al. Complement C5 activation promotes type 2 diabetic kidney disease via activating STAT3 pathway and disrupting the gut-kidney axis. J Cell Mol Med. 2021;25:960-974.
  20. Tan SM, Ziemann M, Thallas-Bonke V, et al. Complement C5a induces renal injury in diabetic kidney disease by disrupting mitochondrial metabolic agility. Diabetes. 2020;69:83-98.
  21. Morigi M, Perico L, Corna D, et al. C3a receptor blockade protects podocytes from injury in diabetic nephropathy. JCI Insight. 2020;5: e131849.
  22. Hansen TK, Tarnow L, Thiel S, et al. Association between mannosebinding lectin and vascular complications in type 1 diabetes. Diabetes. 2004;53:1570-1576.
  23. Saraheimo M, Forsblom C, Hansen TK, et al. Increased levels of mannanbinding lectin in type 1 diabetic patients with incipient and overt nephropathy. Diabetologia. 2005;48:198-202.
  24. Sheng X, Qiu C, Liu H, et al. Systematic integrated analysis of genetic and epigenetic variation in diabetic kidney disease. Proc Natl Acad Sci U S A. 2020;117:29013-29024.
  25. Acosta J, Hettinga J, Flückiger R, et al. Molecular basis for a link between complement and the vascular complications of diabetes. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000;97:5450-5455.
  26. Woroniecka KI, Park AS, Mohtat D, et al. Transcriptome analysis of human diabetic kidney disease. Diabetes. 2011;60:2354-2369.
  27. Angeletti A, Cantarelli C, Petrosyan A, et al. Loss of decay-accelerating factor triggers podocyte injury and glomerulosclerosis. J Exp Med. 2020;217:e20191699.
  28. Han R, Hu S, Qin W, et al. C3a and suPAR drive versican V1 expression in tubular cells of focal segmental glomerulosclerosis. JCI Insight. 2019;4: e122912.
  29. van de Lest NA, Zandbergen M, Wolterbeek R, et al. Glomerular C4d deposition can precede the development of focal segmental glomerulosclerosis. Kidney Int. 2019;96:738-749.
  30. Thurman JM, Wong M, Renner B, et al. Complement activation in patients with focal segmental glomerulosclerosis. PLoS One. 2015;10: e0136558.
  31. Trachtman H, Laskowski J, Lee C, et al. Natural antibody and complement activation characterize patients with idiopathic nephrotic syndrome. Am J Physiol Renal Physiol. 2021;321:F505-F516.
  32. Jiang S, Di D, Jiao Y, et al. Complement deposition predicts worsening kidney function and underlines the clinical significance of the 2010 Renal Pathology Society Classification of Diabetic Nephropathy. Front Immunol. 2022;13:868127.
  33. Ajjan RA, Schroeder V. Role of complement in diabetes. Mol Immunol. 2019;114:270-277.
  34. Rauterberg EW, Lieberknecht HM, Wingen AM, et al. Complement membrane attack (MAC) in idiopathic IgA-glomerulonephritis. Kidney Int. 1987;31:820-829.
  35. Janssen U, Bahlmann F, Kohl J, et al. Activation of the acute phase response and complement C 3 in patients with IgA nephropathy. Am J Kidney Dis. 2000;35:21-28.
  36. Nakagawa H, Suzuki S, Haneda M, et al. Significance of glomerular deposition of C3c and C3d in IgA nephropathy. Am J Nephrol. 2000;20: 122-128.
  37. Garcia-Fuentes M, Martin A, Chantler C, et al. Serum complement components in Henoch-Schonlein purpura. Arch Dis Child. 1978;53:417419.
  38. Dumont C, Merouani A, Ducruet T, et al. Clinical relevance of membrane attack complex deposition in children with IgA nephropathy and Henoch-Schonlein purpura. Pediatr Nephrol. 2020;35:843-850.
  39. Touchard G, Maire P, Beauchant M, et al. Vascular IgA and C3 deposition in gastrointestinal tract of patients with Henoch-Schoenlein purpura. Lancet. 1983;1:771-772.
  40. Morichau-Beauchant , Touchard , Maire , et al. Jejunal IgA and C3 deposition in adult Henoch-Schonlein purpura with severe intestinal manifestations. Gastroenterology. 1982;82:1438-1442.
  41. Roos A, Bouwman LH, van Gijlswijk-Janssen DJ, et al. Human IgA activates the complement system via the mannan-binding lectin pathway. J Immunol. 2001;167:2861-2868.
  42. Roos A, Rastaldi MP, Calvaresi N, et al. Glomerular activation of the lectin pathway of complement in IgA nephropathy is associated with more severe renal disease. J Am Soc Nephrol. 2006;17:1724-1734.
  43. Segarra A, Romero K, Agraz I, et al. Mesangial C4d deposits in early IgA nephropathy. Clin J Am Soc Nephrol. 2018;13:258-264.
  44. Guo WY, Zhu L, Meng SJ, et al. Mannose-binding lectin levels could predict prognosis in IgA nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2017;28:31753181.
  45. Hisano S, Matsushita M, Fujita T, et al. Activation of the lectin complement pathway in Henoch-Schonlein purpura nephritis. Am J Kidney Dis. 2005;45:295-302.
  46. Damman J, Mooyaart AL, Bosch T, et al. Lectin and alternative complement pathway activation in cutaneous manifestations of IgAvasculitis: a new target for therapy? Mol Immunol. 2022;143:114-121.
  47. Zhu L, Zhai YL, Wang FM, et al. Variants in complement factor H and complement factor H-related protein genes, CFHR3 and CFHR1, affect complement activation in IgA nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2015;26: 1195-1204.
  48. Zhu L, Guo WY, Shi SF, et al. Circulating complement factor H-related protein 5 levels contribute to development and progression of IgA nephropathy. Kidney Int. 2018;94:150-158.
  49. Medjeral-Thomas NR, Lomax-Browne HJ, Beckwith H, et al. Circulating complement factor H-related proteins 1 and 5 correlate with disease activity in IgA nephropathy. Kidney Int. 2017;92:942-952.
  50. Medjeral-Thomas NR, Troldborg A, Constantinou N, et al. Progressive IgA nephropathy is associated with low circulating mannan-binding lectin-associated serine protease-3 (MASP-3) and increased glomerular factor H-related protein-5 (FHR5) deposition. Kidney Int Rep. 2018;3: 426-438.
  51. Tan L, Tang Y, Pei G, et al. A multicenter, prospective, observational study to determine association of mesangial C1q deposition with renal outcomes in IgA nephropathy. Sci Rep. 2021;11:5467.
  52. Lee HJ, Choi SY, Jeong KH, et al. Association of C1q deposition with renal outcomes in IgA nephropathy. Clin Nephrol. 2013;80:98-104.
  53. Barbour SJ, Coppo R, Zhang H, et al. Application of the International IgA Nephropathy Prediction Tool one or two years post-biopsy. Kidney Int. 2022;102:160-172.
  54. Barbour SJ, Canney M, Coppo R, et al. Improving treatment decisions using personalized risk assessment from the International Nephropathy Prediction Tool. Kidney Int. 2020;98:1009-1019.
  55. Selvaskandan H, Shi S, Twaij S, et al. Monitoring immune responses in IgA nephropathy: biomarkers to guide management. Front Immunol. 2020;11:572754.
  56. Patel DM, Cantley L, Moeckel G, et al. IgA vasculitis complicated by acute kidney failure with thrombotic microangiopathy: successful use of eculizumab. J Nephrol. 2021;34:2141-2145.
  57. Selvaskandan H, Kay Cheung C, Dormer J, et al. Inhibition of the lectin pathway of the complement system as a novel approach in the management of IgA vasculitis-associated nephritis. Nephron. 2020;144: 453-458.
  58. Herzog AL, Wanner C, Amann K, et al. First treatment of relapsing rapidly progressive IgA nephropathy with eculizumab after living kidney donation: a case report. Transplant Proc. 2017;49:1574-1577.
  59. Nakamura H, Anayama M, Makino M, et al. Atypical hemolytic uremic syndrome associated with complement factor H mutation and IgA nephropathy: a case report successfully treated with eculizumab. Nephron. 2018;138:324-327.
  60. Matsumura D, Tanaka A, Nakamura T, et al. Coexistence of atypical hemolytic uremic syndrome and crescentic IgA nephropathy treated with eculizumab: a case report. Clin Nephrol Case Stud. 2016;4:24-28.
  61. Rosenblad T, Rebetz J, Johansson M, et al. Eculizumab treatment for rescue of renal function in IgA nephropathy. Pediatr Nephrol. 2014;29: 2225-2228.
  62. Ring T, Pedersen BB, Salkus G, et al. Use of eculizumab in crescentic IgA nephropathy: proof of principle and conundrum? Clin Kidney J. 2015;8: 489-491.
  63. Lafayette RA, Rovin BH, Reich HN, et al. Safety, tolerability and efficacy of narsoplimab, a novel MASP-2 inhibitor for the treatment of IgA nephropathy. Kidney Int Rep. 2020;5:2032-2041.
  64. Barratt J, Rovin B, Zhang H, et al. POS-546 Efficacy and safety of iptacopan in IgA nephropathy: results of a randomized double-blind placebo-controlled phase 2 study at 6 months. Kidney Int Rep. 2022;7: S236.
  65. Kistler AD, Salant DJ. Complement activation and effector pathways in membranous nephropathy. Kidney Int. 2024;105:473-483.
  66. Salant DJ, Belok S, Madaio MP, et al. A new role for complement in experimental membranous nephropathy in rats. J Clin Invest. 1980;66: 1339-1350.
  67. Groggel GC, Adler S, Rennke HG, et al. Role of the terminal complement pathway in experimental membranous nephropathy in the rabbit. J Clin Invest. 1983;72:1948-1957.
  68. Cybulsky AV, Quigg RJ, Salant DJ. The membrane attack complex in complement-mediated glomerular epithelial cell injury: formation and stability of C5b-9 and C5b-7 in rat membranous nephropathy. J Immunol. 1986;137:1511-1516.
  69. Saran AM, Yuan H, Takeuchi E, et al. Complement mediates nephrin redistribution and actin dissociation in experimental membranous nephropathy. Kidney Int. 2003;64:2072-2078.
  70. Huang CC, Lehman A, Albawardi A, et al. IgG subclass staining in renal biopsies with membranous glomerulonephritis indicates subclass switch during disease progression. Mod Pathol. 2013;26:799805.
  71. Bally S, Debiec H, Ponard D, et al. Phospholipase A2 receptor-related membranous nephropathy and mannan-binding lectin deficiency. J Am Soc Nephrol. 2016;27:3539-3544.
  72. Espinosa-Hernandez M, Ortega-Salas R, Lopez-Andreu M, et al. C4d as a diagnostic tool in membranous nephropathy. Nefrologia. 2012;32:295299.
  73. Val-Bernal JF, Garijo MF, Val D, et al. C4d immunohistochemical staining is a sensitive method to confirm immunoreactant deposition in formalin-fixed paraffin-embedded tissue in membranous glomerulonephritis. Histol Histopathol. 2011;26:1391-1397.
  74. Haddad G, Lorenzen JM, Ma H, et al. Altered glycosylation of IgG4 promotes lectin complement pathway activation in anti-PLA2R1associated membranous nephropathy. J Clin Invest. 2021;131: e140453.
  75. Gao S, Cui Z, Zhao MH. Complement C3a and C3a receptor activation mediates podocyte injuries in the mechanism of primary membranous nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2022;33:1742-1756.
  76. Hayashi N, Okada K, Matsui Y, et al. Glomerular mannose-binding lectin deposition in intrinsic antigen-related membranous nephropathy. Nephrol Dial Transplant. 2018;33:832-840.
  77. Sethi S, Madden B, Debiec H, et al. Protocadherin 7-associated membranous nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2021;32:1249-1261.
  78. Hanset N, Aydin S, Demoulin N, et al. Podocyte antigen staining to identify distinct phenotypes and outcomes in membranous nephropathy: a retrospective multicenter cohort study. Am J Kidney Dis. 2020;76:624-635.
  79. Sethi S. Membranous nephropathy: a single disease or a pattern of injury resulting from different diseases. Clin Kidney J. 2021;14:2166-2169.
  80. Seifert L, Zahner G, Meyer-Schwesinger C, et al. The classical pathway triggers pathogenic complement activation in membranous nephropathy. Nat Commun. 2023;14:473.
  81. Saleem M, Shaikh S, Hu Z, et al. Post-transplant thrombotic microangiopathy due to a pathogenic mutation in complement Factor I in a patient with membranous nephropathy: case report and review of literature. Front. Immunol. 2022;13:909503.
  82. Birmingham DJ, Irshaid F, Nagaraja HN, et al. The complex nature of serum C3 and C4 as biomarkers of lupus renal flare. Lupus. 2010;19: 1272-1280.
  83. Kostopoulou M, Ugarte-Gil MF, Pons-Estel B, et al. The association between lupus serology and disease outcomes: a systematic literature review to inform the treat-to-target approach in systemic lupus erythematosus. Lupus. 2022;31:307-318.
  84. Macedo AC, Isaac L. Systemic lupus erythematosus and deficiencies of early components of the complement classical pathway. Front Immunol. 2016;7:55.
  85. Ling GS, Crawford G, Buang N, et al. C1q restrains autoimmunity and viral infection by regulating CD8(+) T cell metabolism. Science. 2018;360:558-563.
  86. Castrejón I, Tani C, Jolly M, et al. Indices to assess patients with systemic lupus erythematosus in clinical trials, long-term observational studies, and clinical care. Clin Exp Rheumatol. 2014;32. S-85-95.
  87. Weinstein A, Alexander RV, Zack DJ. A review of complement activation in SLE. Curr Rheumatol Rep. 2021;23:16.
  88. Maslen T, Bruce IN, D’Cruz D, et al. Efficacy of belimumab in two serologically distinct high disease activity subgroups of patients with systemic lupus erythematosus: post-hoc analysis of data from the phase III programme. Lupus Sci Med. 2021;8:e00045.
  89. van Vollenhoven RF, Petri MA, Cervera R, et al. Belimumab in the treatment of systemic lupus erythematosus: high disease activity predictors of response. Ann Rheum Dis. 2012;71:1343-1349.
  90. Dall’Era M, Stone D, Levesque V, et al. Identification of biomarkers that predict response to treatment of lupus nephritis with mycophenolate mofetil or pulse cyclophosphamide. Arthritis Care Res. 2011;63:351357.
  91. Wisnieski JJ, Baer AN, Christensen J, et al. Hypocomplementemic urticarial vasculitis syndrome. Clinical and serologic findings in 18 patients. Medicine. 1995;74:24-41.
  92. Pickering MC, Ismajli M, Condon MB, et al. Eculizumab as rescue therapy in severe resistant lupus nephritis. Rheumatology. 2015;54: 2286-2288.
  93. Coppo R, Peruzzi L, Amore A, et al. Dramatic effects of eculizumab in a child with diffuse proliferative lupus nephritis resistant to conventional therapy. Pediatr Nephrol. 2015;30:167-172.
  94. Giles JL, Choy E, van den Berg C, et al. Functional analysis of a complement polymorphism (rs17611) associated with rheumatoid arthritis. J Immunol. 2015;194:3029-3034.
  95. Toy CR, Song H, Nagaraja HN, et al. The influence of an elastasesensitive complement C5 variant on lupus nephritis and its flare. Kidney Int Rep. 2021;6:2105-2113.
  96. Pickering MC, Walport MJ. Links between complement abnormalities and systemic lupus erythematosus. Rheumatology (Oxford). 2000;39:133-141.
  97. Manzi S, Navratil JS, Ruffing MJ, et al. Measurement of erythrocyte C4d and complement receptor 1 in systemic lupus erythematosus. Arthritis Rheum. 2004;50:3596-3604.
  98. Tedesco F, Borghi MO, Gerosa M, et al. Pathogenic role of complement in antiphospholipid syndrome and therapeutic implications. Front Immunol. 2018;9:1388.
  99. Chaturvedi S, Brodsky RA, McCrae KR. Complement in the pathophysiology of the antiphospholipid syndrome. Front Immunol. 2019;10:449.
  100. Meroni PL, Macor P, Durigutto P, et al. Complement activation in antiphospholipid syndrome and its inhibition to prevent rethrombosis after arterial surgery. Blood. 2016;127:365-367.
  101. Ruffatti A, Tarzia V, Fedrigo M, et al. Evidence of complement activation in the thrombotic small vessels of a patient with catastrophic antiphospholipid syndrome treated with eculizumab. Autoimmun Rev. 2019;18:561-563.
  102. Breen KA, Seed P, Parmar K, et al. Complement activation in patients with isolated antiphospholipid antibodies or primary antiphospholipid syndrome. Thromb Haemost. 2012;107:423-429.
  103. Oku K, Atsumi T, Bohgaki M, et al. Complement activation in patients with primary antiphospholipid syndrome. Ann Rheum Dis. 2009;68: 1030-1035.
  104. Lonati PA, Scavone M, Gerosa M, et al. Blood cell-bound C4d as a marker of complement activation in patients with the antiphospholipid syndrome. Front Immunol. 2019;10:773.
  105. Ruffatti A, Tonello M, Calligaro A, et al. High plasma C5a and C5b-9 levels during quiescent phases are associated to severe antiphospholipid syndrome subsets. Clin Exp Rheumatol. 2022;40:20882096.
  106. Nalli C, Lini D, Andreoli L, et al. Low preconception complement levels are associated with adverse pregnancy outcomes in a multicenter study of 260 pregnancies in 197 women with antiphospholipid syndrome or carriers of antiphospholipid antibodies. Biomedicines. 2021;9:671.
  107. Kim MY, Guerra MM, Kaplowitz E, et al. Complement activation predicts adverse pregnancy outcome in patients with systemic lupus erythematosus and/or antiphospholipid antibodies. Ann Rheum Dis. 2018;77:549-555.
  108. López-Benjume B, Rodríguez-Pintó I, Amigo MC, et al. Eculizumab use in catastrophic antiphospholipid syndrome (CAPS): descriptive analysis from the “CAPS Registry.”. Autoimmun Rev. 2022;21:103055.
  109. Tektonidou MG, Andreoli L, Limper M, et al. EULAR recommendations for the management of antiphospholipid syndrome in adults. Ann Rheum Dis. 2019;78:1296-1304.
  110. Meroni PL, Borghi MO, Raschi E, et al. Pathogenesis of antiphospholipid syndrome: understanding the antibodies. Nat Rev Rheumatol. 2011;7: 330-339.
  111. Chen M, Jayne DRW, Zhao MH. Complement in ANCA-associated vasculitis: mechanisms and implications for management. Nat Rev Nephrol. 2017;13:359-367.
  112. Xing GQ, Chen M, Liu G, et al. Complement activation is involved in renal damage in human antineutrophil cytoplasmic autoantibody associated pauci-immune vasculitis. J Clin Immunol. 2009;29:282-291.
  113. Gou SJ, Yuan J, Chen M, et al. Circulating complement activation in patients with anti-neutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis. Kidney Int. 2013;83:129-137.
  114. Xiao H, Schreiber A, Heeringa P, et al. Alternative complement pathway in the pathogenesis of disease mediated by anti-neutrophil cytoplasmic autoantibodies. Am J Pathol. 2007;170:52-64.
  115. Schreiber A, Xiao H, Jennette JC, et al. C5a receptor mediates neutrophil activation and ANCA-induced glomerulonephritis. J Am Soc Nephrol. 2009;20:289-298.
  116. Merkel PA, Niles J, Jimenez R, et al. Adjunctive treatment with avacopan, an oral C5a receptor inhibitor, in patients with antineutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis. ACR Open Rheumatol. 2020;2:662-671.
  117. Jayne DRW, Bruchfeld AN, Harper L, et al. Randomized trial of C5a receptor inhibitor avacopan in ANCA-associated vasculitis. J Am Soc Nephrol. 2017;28:2756-2767.
    117a. Genest DS, Patriquin CJ, Licht C, et al. Renal thrombotic microangiopathy: a review. Am J Kidney Dis. 2023;81:591-605.
  118. Brocklebank V, Kumar G, Howie AJ, et al. Long-term outcomes and response to treatment in diacylglycerol kinase epsilon nephropathy. Kidney Int. 2020;97:1260-1274.
  119. Blanc C, Roumenina LT, Ashraf Y, et al. Overall neutralization of complement factor H by autoantibodies in the acute phase of the autoimmune form of atypical hemolytic uremic syndrome. J Immunol. 2012;189:3528-3537.
  120. Noris M, Galbusera M, Gastoldi S, et al. Dynamics of complement activation in aHUS and how to monitor eculizumab therapy. Blood. 2014;124:1715-1726.
  121. Galbusera M, Noris M, Gastoldi S, et al. An ex vivo test of complement activation on endothelium for individualized eculizumab therapy in hemolytic uremic syndrome. Am J Kidney Dis. 2019;74:56-72.
  122. Gavriilaki E, Yuan X, Ye Z, et al. Modified Ham test for atypical hemolytic uremic syndrome. Blood. 2015;125:3637-3646.
  123. Caprioli J, Noris M, Brioschi S, et al. Genetics of HUS: The impact of MCP, CFH, and IF mutations on clinical presentation, response to treatment, and outcome. Blood. 2006;108:1267-1279.
  124. Esparza-Gordillo J, Goicoechea de Jorge E, Buil A, et al. Predisposition to atypical hemolytic uremic syndrome involves the concurrence of different susceptibility alleles in the regulators of complement activation gene cluster in 1q32. Hum Mol Genet. 2005;14:703-712.
  125. Arjona E, Huerta A, Goicoechea de Jorge E, et al. Familial risk of developing atypical hemolytic-uremic syndrome. Blood. 2020;136: 1558-1561.
  126. Zuber J, Frimat M, Caillard S, et al. Use of highly individualized complement blockade has revolutionized clinical outcomes after kidney transplantation and renal epidemiology of atypical hemolytic uremic syndrome. J Am Soc Nephrol. 2019;30:2449-2463.
  127. Ariceta G, Fakhouri F, Sartz L, et al. Eculizumab discontinuation in atypical haemolytic uraemic syndrome: TMA recurrence risk and renal outcomes. Clin Kidney J. 2021;14:2075-2084.
  128. Sullivan M, Rybicki LA, Winter A, et al. Age-related penetrance of hereditary atypical hemolytic uremic syndrome. Ann Hum Genet. 2011;75:639-647.
  129. Fakhouri F, Fila M, Provôt F, et al. Pathogenic variants in complement genes and risk of atypical hemolytic uremic syndrome relapse after eculizumab discontinuation. Clin J Am Soc Nephrol. 2017;12:50-59.
  130. Donne RL, Abbs I, Barany P, et al. Recurrence of hemolytic uremic syndrome after live related renal transplantation associated with subsequent de novo disease in the donor. Am J Kidney Dis. 2002;40:E22.
  131. Nishimura J, Yamamoto M, Hayashi S, et al. Genetic variants in C5 and poor response to eculizumab. N Engl J Med. 2014;370:632-639.
  132. Legendre CM, Licht C, Muus P, et al. Terminal complement inhibitor eculizumab in atypical hemolytic-uremic syndrome. N Engl J Med. 2013;368:2169-2181.
  133. Duineveld C , Verhave JC, Berger SP, et al. Living donor kidney transplantation in atypical hemolytic uremic syndrome: a case series. Am J Kidney Dis. 2017;70:770-777.
  134. Ariceta G , Dixon BP , Kim SH , et al. The long-acting C 5 inhibitor, ravulizumab, is effective and safe in pediatric patients with atypical hemolytic uremic syndrome naïve to complement inhibitor treatment. Kidney Int. 2021;100:225-237.
  135. Rondeau E, Scully M, Ariceta G, et al. The long-acting C5 inhibitor, Ravulizumab, is effective and safe in adult patients with atypical hemolytic uremic syndrome naïve to complement inhibitor treatment. Kidney Int. 2020;97:1287-1296.
  136. Fakhouri F, Fila M, Hummel A, et al. Eculizumab discontinuation in children and adults with atypical hemolytic-uremic syndrome: a prospective multicenter study. Blood. 2021;137:2438-2449.
  137. Chaturvedi S, Dhaliwal N, Hussain S, et al. Outcomes of a cliniciandirected protocol for discontinuation of complement inhibition therapy in atypical hemolytic uremic syndrome. Blood Adv. 2021;5:1504-1512.
  138. Gutstein NL, Wofsy D. Administration of F(ab’)2 fragments of monoclonal antibody to L3T4 inhibits humoral immunity in mice without depleting L3T4+ cells. J Immunol. 1986;137:3414-3419.
  139. Kielstein JT, Beutel G, Fleig S, et al. Best supportive care and therapeutic plasma exchange with or without eculizumab in Shiga-toxin-producing E. coli O104:H4 induced haemolytic-uraemic syndrome: an analysis of the German STEC-HUS registry. Nephrol Dial Transplant. 2012;27:38073815.
  140. Yesilbas O, Yozgat CY , Akinci N , et al. Acute myocarditis and eculizumab caused severe cholestasis in a 17-month-old child who has hemolytic uremic syndrome associated with shiga toxin-producing Escherichia coli. J Pediatr Intensive Care. 2021;10:216-220.
  141. Mauras M, Bacchetta J, Duncan A, et al. Escherichia coli-associated hemolytic uremic syndrome and severe chronic hepatocellular cholestasis: complication or side effect of eculizumab? Pediatr Nephrol. 2019;34:1289-1293.
  142. Le Clech A, Simon-Tillaux N, Provôt F, et al. Atypical and secondary hemolytic uremic syndromes have a distinct presentation and no common genetic risk factors. Kidney Int. 2019;95:1443-1452.
  143. Cavero T, Rabasco C, López A, et al. Eculizumab in secondary atypical haemolytic uraemic syndrome. Nephrol Dial Transplant. 2017;32:466474.
  144. Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO) Glomerular Diseases Work Group. KDIGO 2021 Clinical Practice Guideline for the Management of Glomerular Diseases. Kidney Int. 2021;100(4S):S1S276.
  145. Zand L, Fervenza FC, Nasr SH, et al. Membranoproliferative glomerulonephritis associated with autoimmune diseases. J Nephrol. 2014;27:165-171.
  146. Nasr SH, Radhakrishnan J, D’Agati VD. Bacterial infection-related glomerulonephritis in adults. Kidney Int. 2013;83:792-803.
  147. Nasr SH, Satoskar A, Markowitz GS, et al. Proliferative glomerulonephritis with monoclonal IgG deposits. J Am Soc Nephrol. 2009;20:2055-2064.
  148. Meuleman MS, Vieira-Martins P, El Sissy C, et al. Rare variants in complement gene in C3 glomerulopathy and immunoglobulinmediated membranoproliferative GN. Clin J Am Soc Nephrol. 2023;18: 1435-1445.
  149. latropoulos P, Noris M, Mele C, et al. Complement gene variants determine the risk of immunoglobulin-associated MPGN and C3 glomerulopathy and predict long-term renal outcome. Mol Immunol. 2016;71:131-142.
  150. Bu F, Borsa NG, Jones MB, et al. High-throughput genetic testing for thrombotic microangiopathies and C3 glomerulopathies. J Am Soc Nephrol. 2016;27:1245-1253.
  151. Gale DP, Goicoechea de Jorge E, Cook HT, et al. Identification of a mutation in complement factor H-related protein 5 in patients of Cypriot origin with glomerulonephritis. Lancet. 2010;376:794-801.
  152. Malik TH, Lavin PJ, Goicoechea de Jorge E, et al. A hybrid CFHR3-1 gene causes familial C3 glomerulopathy. J Am Soc Nephrol. 2012;23:11551160.
  153. Tortajada A , Yébenes H, Abarrategui-Garrido C , et al. C 3 glomerulopathy-associated CFHR1 mutation alters FHR oligomerization and complement regulation. J Clin Invest. 2013;123:2434-2446.
  154. Chen Q, Wiesener M, Eberhardt HU , et al. Complement factor H-related hybrid protein deregulates complement in dense deposit disease. J Clin Invest. 2014;124:145-155.
  155. Togarsimalemath SK, Sethi SK, Duggal R, et al. A novel CFHR1-CFHR5 hybrid leads to a familial dominant C3 glomerulopathy. Kidney Int. 2017;92:876-887.
  156. Martínez-Barricarte R, Heurich M, Valdes-Cañedo F, et al. Human C3 mutation reveals a mechanism of dense deposit disease pathogenesis and provides insights into complement activation and regulation. J Clin Invest. 2010;120:3702-3712.
  157. Chauvet S , Roumenina LT, Bruneau S , et al. A familial C3GN secondary to defective C3 regulation by complement receptor 1 and complement Factor H. J Am Soc Nephrol. 2016;27:1665-1677.
  158. Levy M, Halbwachs-Mecarelli L, Gubler MC, et al. H deficiency in two brothers with atypical dense intramembranous deposit disease. Kidney Int. 1986;30:949-956.
  159. Ault BH, Schmidt BZ, Fowler NL, et al. Human factor H deficiency. Mutations in framework cysteine residues and block in H protein secretion and intracellular catabolism. J Biol Chem. 1997;272:2516825175.
  160. Zhang Y , Kremsdorf RA, Sperati CJ, et al. Mutation of complement factor B causing massive fluid-phase dysregulation of the alternative complement pathway can result in atypical hemolytic uremic syndrome. Kidney Int. 2020;98:1265-1274.
  161. Levine AP, Chan MMY, Sadeghi-Alavijeh O, et al. Large-scale wholegenome sequencing reveals the genetic architecture of primary membranoproliferative GN and C3 glomerulopathy. J Am Soc Nephrol. 2020;31:365-373.
  162. Finn JE, Mathieson PW. Molecular analysis of C3 allotypes in patients with nephritic factor. Clin Exp Immunol. 1993;91:410-414.
  163. Hocking HG, Herbert AP, Kavanagh D, et al. Structure of the N -terminal region of complement factor H and conformational implications of disease-linked sequence variations. J Biol Chem. 2008;283:9475-9487.
  164. Heurich M, Martínez-Barricarte R, Francis NJ, et al. Common polymorphisms in C3, factor B, and factor H collaborate to determine systemic complement activity and disease risk. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108:8761-8766.
  165. Ding Y, Zhao W, Zhang T, et al. A haplotype in CFH family genes confers high risk of rare glomerular nephropathies. Sci Rep. 2017;7:6004.
  166. Marinozzi MC, Chauvet S, Le Quintrec M, et al. C5 nephritic factors drive the biological phenotype of C3 glomerulopathies. Kidney Int. 2017;92: 1232-1241.
    166a. Hauer JJ, Zhang Y, Goodfellow R, et al. Defining nephritic factors as diverse drivers of systemic complement dysregulation in C3 glomerulopathy. Kidney Int Rep. 2023;9:464-477.
  167. Donadelli R, Pulieri P, Piras R, et al. Unraveling the molecular mechanisms underlying complement dysregulation by nephritic factors in C3G and IC-MPGN. Front Immunol. 2018;9:2329.
  168. Chauvet S, Hauer JJ, Petitprez F, et al. Results from a nationwide retrospective cohort measure the impact of C3 and soluble C5b-9 levels on kidney outcomes in C3 glomerulopathy. Kidney Int. 2022;102:904-916.
  169. Garam N, Prohászka Z, Szilágyi Á, et al. Validation of distinct pathogenic patterns in a cohort of membranoproliferative glomerulonephritis patients by cluster analysis. Clin Kidney J. 2020;13:225-234.
  170. Iatropoulos P, Daina E, Curreri M, et al. Cluster analysis identifies distinct pathogenetic patterns in C3 glomerulopathies/immune complexmediated membranoproliferative GN. J Am Soc Nephrol. 2018;29:283-294.
  171. Chauvet , Berthaud , Devriese , et al. Anti-factor B antibodies and acute postinfectious GN in children. J Am Soc Nephrol. 2020;31:829-840.
    171a. Chauvet , Frémeaux-Bacchi V, Petitprez F, et al. Treatment of B-cell disorder improves renal outcome of patients with monoclonal gammopathy-associated C3 glomerulopathy. Blood. 2017;129:14371447.
  172. Caravaca-Fontán F, Lucientes L, Serra N, et al. C3 glomerulopathy associated with monoclonal gammopathy: impact of chronic histologic lesions and beneficial effects of clone-targeted therapies. Nephrol Dial Transplant. 2021;37:2128-2137.
  173. Smith RJH, Appel GB, Blom AM, et al. C3 glomerulopathyunderstanding a rare complement-driven renal disease. Nat Rev Nephrol. 2019;15:129-143.
  174. Servais A, Noël LH, Roumenina LT, et al. Acquired and genetic complement abnormalities play a critical role in dense deposit disease and other C3 glomerulopathies. Kidney Int. 2012;82:454-464.
  175. Békássy ZD, Kristoffersson AC, Rebetz J, et al. Aliskiren inhibits reninmediated complement activation. Kidney Int. 2018;94:689-700.
  176. Bomback AS, Santoriello D, Avasare RS, et al. C3 glomerulonephritis and dense deposit disease share a similar disease course in a large United States cohort of patients with C3 glomerulopathy. Kidney Int. 2018;93: 977-985.
  177. Caravaca-Fontán F, Trujillo H, Alonso M, et al. Validation of a histologic scoring index for C3 glomerulopathy. Am J Kidney Dis. 2021;77:684-695. e681.
  178. Rabasco C, Cavero T, Román E, et al. Effectiveness of mycophenolate mofetil in C3 glomerulonephritis. Kidney Int. 2015;88:1153-1160.
  179. Avasare RS, Canetta PA, Bomback AS, et al. Mycophenolate mofetil in combination with steroids for treatment of C3 glomerulopathy: a case series. Clin J Am Soc Nephrol. 2018;13:406-413.
  180. Caravaca-Fontán F, Díaz-Encarnación MM, Lucientes L , et al. Mycophenolate mofetil in C3 glomerulopathy and pathogenic drivers of the disease. Clin J Am Soc Nephrol. 2020;15:1287-1298.
  181. Bharati J, Tiewsoh K, Kumar A, et al. Usefulness of mycophenolate mofetil in Indian patients with C3 glomerulopathy. Clin Kidney J. 2019;12:483-487.
  182. Caliskan Y, Torun ES, Tiryaki TO, et al. Immunosuppressive treatment in C3 glomerulopathy: is it really effective? Am J Nephrol. 2017;46:96-107.
  183. Khandelwal P, Bhardwaj S, Singh G, et al. Therapy and outcomes of C3 glomerulopathy and immune-complex membranoproliferative glomerulonephritis. Pediatr Nephrol. 2021;36:591-600.
  184. Ravindran A, Fervenza FC, Smith RJH, et al. C3 glomerulopathy: ten years’ experience at Mayo Clinic. Mayo Clin Proc. 2018;93:991-1008.
  185. Le Quintrec , Lapeyraque , Lionet , et al. Patterns of clinical response to eculizumab in patients with C3 glomerulopathy. Am J Kidney Dis. 2018;72:84-92.
  186. Bomback AS, Smith RJ, Barile GR, et al. Eculizumab for dense deposit disease and C3 glomerulonephritis. Clin J Am Soc Nephrol. 2012;7:748-756.
  187. Ruggenenti P, Daina E, Gennarini A, et al. C5 convertase blockade in membranoproliferative glomerulonephritis: a single-arm clinical trial. Am J Kidney Dis. 2019;74:224-238.
  188. Licht C, Heinen S, Józsi M, et al. Deletion of Lys224 in regulatory domain 4 of Factor H reveals a novel pathomechanism for dense deposit disease (MPGN II). Kidney Int. 2006;70:42-50.
  189. Bomback, A. Orally administered C5AR inhibitor avacopan in a randomized, double-blind, placebo-controlled study (ACCOLADE) for treatment of C3 glomerulopathy. European Renal AssociationEuropean Dialysis and Transplant Association 2021 Congress. Virtual. Oral Presentation LB001. Accessed July 8, 2024. https://era-apps.m-anage.com/eraedta21/en-GB/pag/presentation/493961
  190. Wong E, Nester C, Cavero T, et al. Iptacopan, a novel oral complement alternative pathway factor B inhibitor, significantly reduces urinary
    protein excretion and C3 Deposit Scores in native and transplanted kidneys in patients with C3 glomerulopathy. Presented at the American Society of Nephrology (ASN) 2021 Annual Meeting. J Am Soc Nephrol. 2021;32 (Abstract Supplement):B8.
  191. Dixon BP, Greenbaum LA, Huang L, et al. C3 inhibition with pegcetacoplan targets the underlying disease process of C3 glomerulopathy (C3G) and improves proteinuria. ASN Kidney Week. Abstract PO1852. Accessed June 19, 2024. https://www.asn-online.org/ education/kidneyweek/2020/program-abstract.aspx?controlld=343 9464
  192. Noris M, Donadelli R, Remuzzi G. Autoimmune abnormalities of the alternative complement pathway in membranoproliferative
    glomerulonephritis and C3 glomerulopathy. Pediatr Nephrol. 2019;34: 1311-1323.
  193. Caravaca-Fontán F, Díaz-Encarnación M, Cabello V, et al. Longitudinal change in proteinuria and kidney outcomes in C3 glomerulopathy. Nephrol Dial Transplant. 2022;37:1270-1280.
  194. Heerspink HJL, Greene T, Tighiouart H, et al. Change in albuminuria as a surrogate endpoint for progression of kidney disease: a meta-analysis of treatment effects in randomised clinical trials. Lancet Diabetes Endocrinol. 2019;7:128-139.
  195. Reich HN, Troyanov S, Scholey JW, et al. Remission of proteinuria improves prognosis in IgA nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2007;18: 3177-3183.

  1. Correspondence: Marina Vivarelli, Laboratory of Nephrology, Bambino Gesù Children Hospital IRCCS, Piazza S. Onofrio 4, 00165 Rome, Italy. E-mail: marina.vivarelli@opbg.net; or Richard J.H. Smith, Molecular Otolaryngology and Renal Research Laboratories and lowa Institute of Human Genetics, Department of Otolaryngology Head and Neck Surgery, University of lowa, 200 Hawkins Drive, lowa City, lowa 52242, USA. E-mail: Richard-smith@ uiowa.edu
    Additional Conference Participants are listed in the Appendix.


  2. toxin-producing Escherichia coli; TMA, thrombotic microangiopathy.
    biosimilar agents or in phase 4 are also not listed. The studies enroll adults only unless specified.
    Recent data do not support a role for renin in the cleavage of C3 and suggest that the use of aliskiren as a renin inhibitor to decrease complement activity and C3 convertase formation is misguided.