تشارك NatA في مجمعات متعددة العوامل عند مخرج نفق البولي ببتيد الريبوسومي NatA engages in multi-factor complexes at the ribosomal polypeptide tunnel exit

شارك:
المجلة: Nature Communications، المجلد: 17، العدد: 1
DOI: https://doi.org/10.1038/s41467-026-68787-5
PMID: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/41577663
تاريخ النشر: 2026-01-23
المؤلف: Marius A. Klein وآخرون
الموضوع الرئيسي: آليات تخليق RNA والبروتين

نظرة عامة

تعديل الأسيتيل على الطرف N (NTA) هو تعديل ما بعد الترجمة شائع في البروتينات حقيقية النواة، وهو ضروري للحفاظ على توازن البروتينات، حيث يخضع حوالي 40% من البروتينات البشرية لعملية الأسيتيل بشكل مشترك أثناء الترجمة عبر مركب NatA. تتطلب هذه العملية استئصال الميثيونين في الطرف N (NME) مسبقًا. تشير النتائج الحديثة إلى أن NatA يمكن أن يشكل مجمعات متعددة الإنزيمات مع MAP1/NAC أو MAP2، مما يدمج وظائف NME وNTA.

بالإضافة إلى هذه المجمعات، تكشف أبحاثنا أن NatA يمكن أن يجمع مجمعات مستقلة عن الريبوسوم مع عوامل مرتبطة بالريبوسوم (RAFs) متنوعة. عند الريبوسوم، يمكن أن ينشئ NatA مجمعًا ثلاثيًا مع الإنزيم الزائف Ebp1 أو جزيء آخر من NatA، والذي يمكن تنسيقه استراتيجيًا من موقع ارتباط بديل لزيادة الوصول إلى الركيزة. كما نحدد موقع ارتباط محفوظ على NatA يتفاعل مع أربعة RAFs—Ebp1 وNAC وNaa10 وHypK—مما يسهل تشكيل مجمعات متعددة العوامل متنوعة عند مخرج قناة الريبوسوم. هذه النتائج تضع NatA كمركز تفاعل حاسم يلعب دورًا كبيرًا في تنسيق نضوج البروتينات المشترك أثناء الترجمة.

الطرق

يستعرض قسم “الطرق” في ورقة البحث الإجراءات التجريبية والتحليلية المستخدمة للتحقيق في أسئلة البحث. يوضح معايير اختيار المشاركين، وتصميم الدراسة، والتقنيات المحددة المستخدمة لجمع البيانات وتحليلها. تشمل المنهجيات مقاييس كمية، مثل الاختبارات الإحصائية والنمذجة الرياضية، لضمان قوة النتائج.

بالإضافة إلى ذلك، يصف القسم الأدوات والبرامج المستخدمة لتحليل البيانات، مع التأكيد على أهميتها في تحقيق نتائج دقيقة. كما يتم تناول الاعتبارات الأخلاقية المتعلقة بموافقة المشاركين والتعامل مع البيانات، لضمان الامتثال للمعايير البحثية المعمول بها. بشكل عام، تم تصميم الطرق المستخدمة لتوفير فهم شامل للظواهر قيد الدراسة، مما يسهل التحقق من فرضيات البحث.

النتائج

توضح نتائج هذه الدراسة التفاعلات بين بروتينات ربط NatA (NAC وHypK وNaa50) ومعالجتها المشتركة أثناء الترجمة بواسطة MAP1 وNatA. أظهرت تجارب الربط في المختبر تشكيل مجمعات مستقرة بنسبة 1:1 بين NAC وMAP1، وكذلك NAC وNatA، مما يشير إلى تفاعلات عالية الألفة مستقلة عن الريبوسوم. كشفت تقنية تداخل الطبقات الحيوية (BLI) أن MAP1 يرتبط بـ NAC بألفة عالية (K_d = 196 نانومتر)، بينما يظهر NatA ألفة أعلى لـ NAC عندما يكون MAP1 موجودًا (K_d = 104 نانومتر). من الجدير بالذكر أن NAC ضروري لتفاعل MAP1-NatA، كما يتضح من الربط الضعيف الذي لوحظ عندما تم تثبيت MAP1 دون ارتباط مسبق بـ NAC.

بالإضافة إلى ذلك، تسلط الدراسة الضوء على التأثيرات التنافسية لـ HypK وNaa50 على تفاعل NAC-NatA. بينما قلل Naa50 قليلاً من ألفة NatA لـ NAC، فإن HypK عطل بشكل كبير هذا التفاعل، مما يشير إلى أن الريبوسوم يلعب دورًا حاسمًا في الوساطة بين مجمع NAC-NatA-HypK. علاوة على ذلك، كشفت تحليلات الكريو-EM أن Ebp1 وNatA يمكن أن يشكلا مجمعًا ثلاثيًا عند الريبوسوم، مع بقاء Ebp1 في موضع ارتباطه بينما يتفاعل NatA دون تصادم حجمي. تشير النتائج أيضًا إلى أن NatA لديه موقعان متميزان للارتباط عند الريبوسوم، أحدهما قريب والآخر بعيد، مما قد يؤثر على تنسيق Naa50 داخل مجمع NatE. بشكل عام، توفر هذه النتائج رؤى حول التفاعلات الديناميكية والآليات التنظيمية لمجمعات NatA في الخلايا البشرية.

المناقشة

في هذا القسم، يناقش المؤلفون الديناميات التنافسية لأربعة عوامل مرتبطة بالريبوسوم (RAFs) لموقع ارتباط محفوظ على Naa15، وهو مكون من مركب NatA المعني بالأسيتيل المشترك أثناء الترجمة. تتطلب الخصوصية الواسعة للركيزة لـ NatA آليات تنظيمية، حيث تم تحديد HypK كمثبط كبير لنشاط Naa10 التحفيزي. تكشف التحليلات الهيكلية أن HypK يقيد مرونة Naa15 الشكلية، مما يمنع NatA-HypK من الارتباط بالريبوسوم. يظهر المؤلفون أن NAC وEbp1 وNaa10 القريب يمكن أن ترتبط أيضًا بنفس الموقع على Naa15، مما يبرز مشهدًا تنافسيًا لهذه RAFs في مركز نقل الببتيديل (PTE) للريبوسوم. تعتبر بقعة هيدروفوبية محفوظة، تتميز بشكل خاص بوجود بقايا تريبتوفان مركزية، ضرورية لهذه التفاعلات.

تتناول المناقشة أيضًا تنسيق الأنشطة الإنزيمية بين NatA ومجمعات أخرى، مثل MAP1 وNaa50. من الجدير بالذكر أنه بينما يمكن أن يشكل NAC مجمعًا ثلاثيًا مع NatA وMAP1 في غياب الريبوسوم، فإن Naa50 يؤثر سلبًا على ارتباط NAC. يؤكد المؤلفون أن ألفة الربط القوية لـ HypK مع NatA تعيق بشكل كبير قدرة NAC على تشكيل مجمعات مع NatA، مما يشير إلى أن الريبوسوم يلعب دورًا حاسمًا في تعديل هذه التفاعلات. الطبيعة الديناميكية لـ Naa15 تسمح له بتنسيق عدة RAFs، مما قد يؤثر على خصوصية الركيزة وأنشطتها التحفيزية. تسلط النتائج الضوء على تعقيد تنظيم NatA عند الريبوسوم، مع تداعيات لفهم تنسيق التعديلات المشتركة أثناء الترجمة في الخلايا البشرية.

Journal: Nature Communications, Volume: 17, Issue: 1
DOI: https://doi.org/10.1038/s41467-026-68787-5
PMID: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/41577663
Publication Date: 2026-01-23
Author(s): Marius A. Klein et al.
Primary Topic: RNA and protein synthesis mechanisms

Overview

N-terminal acetylation (NTA) is a prevalent post-translational modification in eukaryotic proteins, essential for maintaining proteostasis, with approximately 40% of the human proteome undergoing acetylation co-translationally via the NatA complex. This process necessitates prior N-terminal methionine excision (NME). Recent findings indicate that NatA can form multi-enzyme complexes with MAP1/NAC or MAP2, integrating NME and NTA functions.

In addition to these complexes, our research reveals that NatA can assemble ribosome-independent complexes with various ribosome-associated factors (RAFs). At the ribosome, NatA can create a ternary complex with the pseudoenzyme Ebp1 or another NatA molecule, which can be strategically coordinated from an alternative binding site for enhanced substrate access. We also identify a conserved binding site on NatA that interacts with four RAFs—Ebp1, NAC, Naa10, and HypK—facilitating the formation of diverse multi-factor complexes at the ribosomal tunnel exit. These findings position NatA as a critical interaction hub that plays a significant role in the coordination of co-translational protein maturation.

Methods

The “Methods” section of the research paper outlines the experimental and analytical procedures employed to investigate the research questions. It details the selection criteria for participants, the design of the study, and the specific techniques used for data collection and analysis. The methodologies include quantitative measures, such as statistical tests and mathematical modeling, to ensure the robustness of the findings.

Additionally, the section describes the tools and software utilized for data analysis, emphasizing their relevance in achieving accurate results. Ethical considerations regarding participant consent and data handling are also addressed, ensuring compliance with established research standards. Overall, the methods employed are designed to provide a comprehensive understanding of the phenomena under study, facilitating the validation of the research hypotheses.

Results

The results of this study elucidate the interactions between NatA binding proteins (NAC, HypK, and Naa50) and their cotranslational processing by MAP1 and NatA. In vitro binding experiments demonstrated the formation of stable 1:1 complexes between NAC and MAP1, as well as NAC and NatA, indicating high-affinity interactions independent of the ribosome. Biolayer interferometry (BLI) revealed that MAP1 binds NAC with a high affinity (K_d = 196 nM), while NatA exhibits an even higher affinity for NAC when MAP1 is present (K_d = 104 nM). Notably, NAC is essential for the MAP1-NatA interaction, as evidenced by the weak binding observed when MAP1 was immobilized without prior NAC association.

Additionally, the study highlights the competitive effects of HypK and Naa50 on the NAC-NatA interaction. While Naa50 slightly decreased the affinity of NatA for NAC, HypK significantly disrupted this interaction, suggesting that the ribosome plays a crucial role in mediating the NAC-NatA-HypK complex. Furthermore, cryo-EM analyses revealed that Ebp1 and NatA can form a ternary complex at the ribosome, with Ebp1 maintaining its binding position while NatA interacts without steric clash. The findings also indicate that NatA has two distinct binding sites at the ribosome, one proximal and one distal, which may influence the coordination of Naa50 within the NatE complex. Overall, these results provide insights into the dynamic interactions and regulatory mechanisms of NatA complexes in human cells.

Discussion

In this section, the authors discuss the competitive dynamics of four ribosome-associated factors (RAFs) for a conserved binding site on Naa15, a component of the NatA complex involved in co-translational acetylation. The broad substrate specificity of NatA necessitates regulatory mechanisms, with HypK identified as a significant inhibitor of Naa10’s catalytic activity. Structural analyses reveal that HypK restricts Naa15’s conformational flexibility, thereby preventing NatA-HypK from binding to the ribosome. The authors demonstrate that NAC, Ebp1, and proximal Naa10 can also bind to the same site on Naa15, highlighting a competitive landscape for these RAFs at the peptidyl transferase center (PTE) of the ribosome. A conserved hydrophobic patch, particularly featuring a central tryptophan residue, is crucial for these interactions.

The discussion further elaborates on the coordination of enzymatic activities between NatA and other complexes, such as MAP1 and Naa50. Notably, while NAC can form a ternary complex with NatA and MAP1 in the absence of the ribosome, Naa50 negatively impacts NAC binding. The authors emphasize that HypK’s strong binding affinity to NatA significantly inhibits NAC’s ability to form complexes with NatA, suggesting that the ribosome plays a critical role in modulating these interactions. The dynamic nature of Naa15 allows it to coordinate multiple RAFs, potentially influencing their substrate specificity and catalytic activities. The findings underscore the complexity of NatA regulation at the ribosome, with implications for understanding the orchestration of co-translational modifications in human cells.