DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-024-06637-3
PMID: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39800725
تاريخ النشر: 2025-01-12
المؤلف: Khalid M. Mohammedsalih وآخرون
الموضوع الرئيسي: الطفيليات وتفاعلاتها مع المضيف
نظرة عامة
تقيّم هذه الدراسة فعالية ثلاث طرق كوبروسكوبي – الطفو شبه الكمي، ومكماس، وMini-FLOTAC – لتشخيص عدوى الديدان الطفيلية في الجمال، باستخدام 410 عينة براز تم جمعها في جنوب دارفور، السودان. ركز التحليل على الدقة والحساسية والموثوقية بين المقيمين، والارتباط بين العينات الفردية والمجمعة من البراز. أظهرت النتائج أن Mini-FLOTAC تفوقت على كل من طريقة الطفو شبه الكمي وطريقة مكماس، خاصة في الكشف عن بيض الديدان الشريطية، Strongyloides spp.، وMoniezia spp. على وجه الخصوص، أظهرت Mini-FLOTAC حساسية أعلى ومتوسط بيض لكل جرام (EPG) من البراز، حيث تجاوز 28.5% من الحيوانات عتبة العلاج من EPG ≥ 200 مقارنة بـ 19.3% لمكماس.
تشير النتائج إلى أنه بينما حددت الطرق الثلاثة بفعالية الأجناس الأربعة من الديدان الطفيلية – الديدان الشريطية، Strongyloides spp.، Trichuris spp.، وMoniezia spp. – فإن Mini-FLOTAC هي الطريقة المفضلة لتQuantifying العدوى بسبب أدائها المتفوق في استعادة الديدان الطفيلية المعوية. وتخلص الدراسة إلى أن استخدام Mini-FLOTAC لاختبارات تقليل عدد بيض البراز (FECRTs) سيعزز اتخاذ قرارات العلاج في الجمال، نظرًا لقوتها الإحصائية الأعلى ودقتها في الكشف عن العدوى.
مقدمة
تسلط مقدمة ورقة البحث الضوء على التأثير الكبير لعدوى الديدان الطفيلية، خاصة في المناطق الاستوائية مثل السودان، حيث تشكل تحديات صحية واقتصادية واجتماعية خطيرة لكل من البشر والحيوانات. يعد الرصد المنتظم لهذه العدوى من خلال استراتيجيات الفحص، وخاصة عد البيض في البراز (FEC)، أمرًا ضروريًا للتشخيص البيطري الفعال، وتقييم فعالية العلاج، وإدارة مقاومة الأدوية الطفيلية. تشمل الطرق التشخيصية التقليدية، التي تعتمد أساسًا على المجهر، تقنيات تركيز مختلفة مثل الطفو والترسيب، حيث تعتبر طريقة مكماس معيارًا طويل الأمد. ومع ذلك، فإن ظهور مقاومة الأدوية الطفيلية يتطلب استراتيجيات مراقبة أكثر قوة، وتقديم عينات مركبة كبديل فعال من حيث التكلفة.
الجمل (Camelus dromedarius)، المعروف بقدرته على التحمل في البيئات القاحلة، عرضة بشكل خاص للديدان الطفيلية المعوية، والتي يمكن أن تؤدي إلى مشاكل صحية خطيرة. على الرغم من أهمية التقييمات الروتينية لفعالية الأدوية الطفيلية من خلال اختبارات تقليل عدد بيض البراز (FECRTs)، لا تزال هناك تحديات في تفسير هذه الاختبارات بدقة بسبب التباين في تقنيات عد البيض. لقد ظهرت طريقة Mini-FLOTAC كبديل واعد لتقنية مكماس، حيث تقدم حساسية ودقة محسنتين. ومع ذلك، فإن تطبيقها في الدراسات الوبائية للجمال محدود، ولا يوجد توافق حول البروتوكول التشخيصي الأمثل لعدوى الديدان الطفيلية في الجمال. تهدف هذه الدراسة إلى مقارنة طريقة الطفو شبه الكمي مع طرق مكماس وMini-FLOTAC الكمية لتحديد أكثر الأدوات التشخيصية فعالية لتقييم عدوى الديدان الخيطية في عينات براز الجمل.
طرق
في هذه الدراسة، تم تقييم دقة وحساسية طريقتين كميتين لعد بيض البراز (FEC)، مكماس وMini-FLOTAC، باستخدام ست عينات براز من الجمال. تم تقسيم كل عينة للتحليل، حيث تم تخصيص 6 جرامات لمكماس و10 جرامات لـ Mini-FLOTAC. شمل تحليل الدقة عد البيض من 40 مل من المادة البرازية المصفاة، مقسمة إلى أربع حصص 10 مل، حيث تم عد كل حصة ست مرات. أظهرت المقارنات الإحصائية اختلافات كبيرة في عدد البيض بين الطريقتين لبعض العينات، حيث كانت Mini-FLOTAC عمومًا تعطي قيمًا أعلى من المتوسط والوسيط لعدد البيض لكل جرام (EPG) مقارنة بمكماس. كانت الانحرافات المعيارية (SD) متشابهة عبر الطرق، على الرغم من تحديد بعض القيم الشاذة الملحوظة.
تم تقييم حساسية الطرق باستخدام 404 عينات، حيث تم اختبار كل طريقة ثلاث مرات. أظهرت النتائج أنه بينما أظهرت Mini-FLOTAC حساسية عالية لبيض الديدان الشريطية، أظهرت كل من مكماس والطفو شبه الكمي انخفاضًا في اكتشاف العينات الإيجابية مع العد المتكرر. أظهرت تحليلات موثوقية المقيمين أن Mini-FLOTAC كانت لديها أعلى توافق مع معيار ذهبي لتحديد العينات الإيجابية، خاصة بالنسبة للديدان الشريطية وMoniezia spp. كان الارتباط بين قيم EPG من Mini-FLOTAC ومكماس قويًا (r = 0.915)، مما يشير إلى أن Mini-FLOTAC توفر تقديرًا أكثر موثوقية لعدد البيض. بشكل عام، تسلط النتائج الضوء على الفعالية المقارنة لهذه الطرق في الكشف عن بيض الديدان الطفيلية في براز الجمال، حيث أظهرت Mini-FLOTAC حساسية ودقة متفوقتين.
نتائج
يقدم قسم “النتائج” من ورقة البحث النتائج الرئيسية المستمدة من التجارب أو التحليلات التي تم إجراؤها. يوضح نتائج الدراسة، مع تسليط الضوء على نقاط البيانات والاتجاهات المهمة التي لوحظت في النتائج. قد يتضمن القسم تحليلات إحصائية، ومقارنات مع دراسات سابقة، وآثار النتائج فيما يتعلق بأسئلة البحث المطروحة.
عادةً ما يتم توضيح النتائج المحددة من خلال الجداول أو الرسوم البيانية أو المعادلات، مما يوفر تمثيلًا بصريًا واضحًا للبيانات. يركز القسم على أهمية النتائج، مناقشًا تأثيرها المحتمل على مجال الدراسة ويقترح سبلًا للبحث المستقبلي بناءً على النتائج الملاحظة. بشكل عام، تسهم النتائج في فهم أعمق للموضوع وتؤكد الفرضيات المطروحة في المقدمة.
مناقشة
هدفت الدراسة التي أجريت في ولاية جنوب دارفور، السودان، إلى تقييم حساسية ودقة ثلاث طرق تشخيصية – الطفو شبه الكمي، مكماس، وMini-FLOTAC – للكشف عن بيض الديدان الطفيلية في براز الجمال. تم جمع ما مجموعه 410 عينة براز من الجمال في سوق الماشية، وتم تقييم الطرق لقدرتها على تحديد أجناس مختلفة من الديدان الطفيلية، بما في ذلك الديدان الشريطية، Strongyloides spp.، Trichuris spp.، وMoniezia spp. أظهرت طريقة Mini-FLOTAC أعلى حساسية، حيث اكتشفت 71.0% من العينات الإيجابية، متفوقة بشكل كبير على مكماس (55.2%) والطفو شبه الكمي (50.3%) (P < 0.001). كما استكشفت الدراسة فعالية تجميع عينات البراز، وكشفت أن النتائج المجمعة لم تتوافق إيجابيًا مع عد العينات الفردية، مما يشير إلى قيود محتملة في استخدام العينات المجمعة للتشخيص الدقيق. تؤكد النتائج على أهمية اختيار الأدوات التشخيصية المناسبة لعدوى الديدان الطفيلية في الجمال، خاصة في البيئات السريرية حيث يكون الكشف الدقيق أمرًا حاسمًا لقرارات العلاج. تشير حساسية ودقة طريقة Mini-FLOTAC المتفوقة إلى أنها قد تكون الخيار المفضل لتشخيص عدوى الديدان الطفيلية في الجمال، بينما تسلط الدراسة الضوء على الحاجة إلى مزيد من التحقيق في تمثيل العينات المجمعة في هذه الأنواع. بالإضافة إلى ذلك، توفر الدراسة رؤى قيمة حول انتشار عدوى الديدان الطفيلية المحددة في الجمال، مما يساهم في فهم الأعباء الطفيلية في الماشية وإبلاغ استراتيجيات العلاج المستهدفة.
DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-024-06637-3
PMID: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39800725
Publication Date: 2025-01-12
Author(s): Khalid M. Mohammedsalih et al.
Primary Topic: Parasites and Host Interactions
Overview
This study evaluates the efficacy of three coproscopic methods—semi-quantitative flotation, McMaster, and Mini-FLOTAC—for diagnosing helminth infections in camels, using 410 faecal samples collected in South Darfur, Sudan. The analysis focused on precision, sensitivity, inter-rater reliability, and the correlation between individual and pooled faecal samples. Results indicated that Mini-FLOTAC outperformed both the semi-quantitative flotation and McMaster methods, particularly in detecting strongyle eggs, Strongyloides spp., and Moniezia spp. Specifically, Mini-FLOTAC demonstrated a higher sensitivity and mean eggs per gram (EPG) of faeces, with 28.5% of animals exceeding the treatment threshold of EPG ≥ 200 compared to 19.3% for McMaster.
The findings suggest that while all three methods effectively identified the four helminth genera—strongyles, Strongyloides spp., Trichuris spp., and Moniezia spp.—Mini-FLOTAC is the preferred method for quantifying infections due to its superior performance in recovering gastrointestinal helminths. The study concludes that utilizing Mini-FLOTAC for faecal egg count reduction tests (FECRTs) will enhance treatment decision-making in camels, given its higher statistical power and accuracy in detecting infections.
Introduction
The introduction of the research paper highlights the significant impact of helminth infections, particularly in tropical regions like Sudan, where they pose serious health and socio-economic challenges for both humans and animals. Regular monitoring of these infections through screening strategies, particularly faecal egg counting (FEC), is essential for effective veterinary diagnostics, treatment efficacy assessment, and management of anthelmintic resistance. Traditional diagnostic methods, primarily based on microscopy, include various concentration techniques such as flotation and sedimentation, with the McMaster method being a longstanding standard. However, the emergence of anthelmintic resistance necessitates more robust surveillance strategies, and composite sampling presents a cost-effective alternative.
The dromedary camel (Camelus dromedarius), known for its resilience in arid environments, is particularly susceptible to gastrointestinal helminths, which can lead to severe health issues. Despite the importance of routine assessments of anthelmintic efficacy through faecal egg count reduction tests (FECRTs), challenges remain in accurately interpreting these tests due to variability in egg counting techniques. The Mini-FLOTAC method has emerged as a promising alternative to the McMaster technique, offering enhanced sensitivity and precision. However, its application in camel epidemiological studies is limited, and there is no consensus on the optimal diagnostic protocol for helminth infections in camels. This study aims to compare the semi-quantitative flotation method with the quantitative McMaster and Mini-FLOTAC methods to identify the most effective diagnostic tools for assessing nematode infections in camel faecal samples.
Methods
In this study, the precision and sensitivity of two quantitative faecal egg count (FEC) methods, McMaster and Mini-FLOTAC, were evaluated using six camel faecal samples. Each sample was divided for analysis, with 6 g allocated to McMaster and 10 g to Mini-FLOTAC. The precision analysis involved counting eggs from 40 mL of filtered faecal material, divided into four 10-mL aliquots, with each aliquot counted six times. Statistical comparisons revealed significant differences in egg counts between the two methods for certain samples, with Mini-FLOTAC generally yielding higher mean and median eggs per gram (EPG) values compared to McMaster. The standard deviations (SD) were similar across methods, although notable outliers were identified.
The sensitivity of the methods was assessed using 404 samples, with each method tested in triplicate. Results indicated that while Mini-FLOTAC showed high sensitivity for strongyle eggs, both McMaster and semi-quantitative flotation exhibited a decrease in positive sample detection with repeated counts. Inter-rater reliability analyses demonstrated that Mini-FLOTAC had the highest agreement with a gold standard for identifying positive samples, particularly for strongyles and Moniezia spp. The correlation between EPG values from Mini-FLOTAC and McMaster was strong (r = 0.915), suggesting that Mini-FLOTAC provides a more reliable estimate of egg counts. Overall, the findings highlight the comparative effectiveness of these methods in detecting helminth eggs in camel faeces, with Mini-FLOTAC showing superior sensitivity and precision.
Results
The “Results” section of the research paper presents the key findings derived from the conducted experiments or analyses. It details the outcomes of the study, highlighting significant data points and trends observed in the results. The section may include statistical analyses, comparisons with previous studies, and the implications of the findings in relation to the research questions posed.
Specific results are typically illustrated through tables, graphs, or equations, providing a clear visual representation of the data. The section emphasizes the relevance of the findings, discussing their potential impact on the field of study and suggesting avenues for future research based on the observed outcomes. Overall, the results contribute to a deeper understanding of the topic and validate the hypotheses put forth in the introduction.
Discussion
The study conducted in South Darfur State, Sudan, aimed to evaluate the sensitivity and precision of three diagnostic methods—semi-quantitative flotation, McMaster, and Mini-FLOTAC—for detecting helminth eggs in camel faeces. A total of 410 faecal samples were collected from camels at a livestock market, and the methods were assessed for their ability to identify various helminth genera, including strongyles, Strongyloides spp., Trichuris spp., and Moniezia spp. The Mini-FLOTAC method demonstrated the highest sensitivity, detecting 71.0% of positive samples, significantly outperforming the McMaster (55.2%) and semi-quantitative flotation (50.3%) methods (P < 0.001). The study also explored the effectiveness of pooling faecal samples, revealing that pooled results did not correlate positively with individual sample counts, indicating potential limitations in using pooled samples for accurate diagnosis. The findings underscore the importance of selecting appropriate diagnostic tools for helminth infections in camels, particularly in clinical settings where accurate detection is crucial for treatment decisions. The Mini-FLOTAC method's superior sensitivity and precision suggest it may be the preferred choice for diagnosing helminth infections in camels, while the study highlights the need for further investigation into the representativeness of pooled samples in this species. Additionally, the study provides valuable insights into the prevalence of specific helminth infections in camels, contributing to the understanding of parasitic burdens in livestock and informing targeted treatment strategies.